Vai al contenuto| Home page|

   Ti trovi in: HOME »Programmi, progetti e risultati »I progetti »PRIN - Programmi di ricerca di Rilevante Interesse Nazionale»Programma di ricerca
INIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE

PROGRAMMA DI RICERCA

italiano - english
Programmi di ricerca simili:
Classificazione scientifico-disciplinare
Classificazione geografica
Bibliografia
1. • Geurtsen W. Biocompatibility of resin-modified filling materials. Crit Rev Oral Biol Med. 2000;11(3):333-55.
2. • Kugel G. Direct and indirect adhesive restorative materials: a review. Am J Dent. 2000 Nov;13(Spec No):35D-40D.
3. • Ortengren U, Wellendorf H, Karlsson S, Ruyter IE. Water sorption and solubility of dental composites and identification of monomers released in an aqueous environment. J Oral Rehabil. 2001 Dec;28(12):1106-15.
4. • Coombes AG, Verderio E, Shaw B, Li X, Griffin M, Downes S. Biocomposites of non-crosslinked natural and synthetic polymers. Biomaterials. 2002 May;23(10):2113-8.
5. • Pistorius A, Willershausen B. Biocompatibility of dental materials in two human cell lines. Eur J Med Res. 2002 Feb 21;7(2):81-8.
6. • Marques AP, Reis RL, Hunt JA. The biocompatibility of novel starch-based polymers and composites: in vitro studies. Biomaterials. 2002 Mar;23(6):1471-8.
7. • Ferracane JL, Greener EH. The effect of resin formulation on the degree of conversion and mechanical properties of dental restorative resins. J Biomed Mater Res 1986, 20: 121-31.
8. • Ferracane JL, Mitchem JC, Condon JR, Todd R. Wear and marginal breakdown of composites with various degrees of cure. J Dent Res 1997; 76(8): 1508-16.
9. • Moszner N, Salz U. New developments of polymeric dental composites. Prog Polym Sci 2001, 26: 535-76.
10. • Narayanan V, Scranton AB. Photopolymerization of Composites. TRIP 1997, 5: 415-9.
11. • Nomoto R, Hirasawa T. Residual monomer and pendant methacryloyl group in light-cured composite resins. Dent Mater J 1992, 11: 177-88.
12. • Peutzfeldt A, Sahafi A, Asmussen E. Characterization of resin composites polymerized with plasma arc curing units. Dent Mater 2000, 16: 330-36.
13. • Silikas N, Eliades G, Watts DC. Light intensity effects on resin composite degree of conversion and shrinkage strain. Dent Mater 2000, 16: 292-96.
14. • Stansbury JW, Dickens SH. Network formation and compositional drift during photoinitiated copolymerization of dimethacrylate monomers. Polymer 2001, 42: 6363-69.
15. •Bollen CM, Papaioanno W, Van Eldere J, Schepers E, Quirynen M, van Steenberghe D. The influence of abutment surface roughness on plaque accumulation and peri-implant mucositis. Clin Oral Implants Res. 1996 Sep;7(3):201-11.
16. • Chung KH. Effects of finishing and polishing procedures on the surface texture of resin composites. Dent Mater 1994; 10(5): 325-30.
17. • Setcos JC, Tarim B, Suzuki S. Surface finish produced on resin composites by new polishing systems. Quintessence Int 1999; 30(3): 169-73.
18. • Yap AU, Lye KW, Sau CW. Surface characteristics of tooth-colored restoratives polished utilizing different polishing systems. Oper Dent 1997; 22(6): 260-5.
19. • Yap AU, Sau CW, Lye KW. Effects of finishing/polishing time on surface characteristics of tooth-colored restoratives. J Oral Rehabil 1998; 25(6): 456-6
20. • Barnett F . Pulpal response to restorative procedures and materials. Curr Opin Dent 1992, 2:93-98.
21. • Bellon JM, Bujan J, Contreras L, Hernando A . Integration of biomaterials implanted into abdominal wall: Process of scar formation and macrophage response. Biomaterials 1995, 16(5):381-387.
22. • Berse B, Brown LF, Van de WL, Dvorak HF, Senger DR . Vascular permeability factor (vascular endothelial growth factor) gene is expressed differentially in normal tissues, macrophages, and tumors. Mol Biol Cell 1992, 3(2):211-220.
23. • Bloom BR, Bennet B . Mechanism of a reaction in vitro associated with delayed-type hypersensitivity. Science 1996, 153:80-82.
24. • Costa CA, Teixeira HM, Do Nascimento AB, Hebling J . Biocompatibility of two current adhesive resins. J Endod 2000, 26(9):512-516.
25. • Dagtekin G, Schiffer R, Klein B, Jahnen-Dechent W, Zwadlo-Klarwasser G . Modulation of angiogenic functions in human macrophages by biomaterials. Biomaterials 2003, 24:3395-3401.
26. • David LR, Al-Askari S, Lawrence HS, Thomas L . Delayed hypersensitivity in vitro. J Immunol 1964, 93:264-282.
27. • Folkman J. Angiogenesis in cancer, vascular, rheumatoid and other disease. Nat Med 1995, 1(1):27-31.
28. • Grieve AR, Alani A, Saunders WP . The effects on the dental pulp of a composite resin and two dentine bonding agents and associated bacterial microleakage. Int Endod J 1991, 24:108-118.
29. • Hagerty RD, Salzmann DL, Kleinert LB, Williams SK . Cellular proliferation and macrophage population associated with implanted expanded polytetrafluoroethylene and polyethleneterephthalate. J Biom Mat Res 2000, 49(4):484-487.
30. • Jaffe EA, Ruggiero JT, Falcone DJ . Monocytes and macrophages synthetize and secrete thrombospondin. Blood 1985, 65(1):79-84.
31. • Koch AE, Polverini PJ, Kunkel SL, Harlow LA, Dipietro LA, Elner VM, Elner SG, Strieter RM . Interleukin-8 as a macrophage-derived mediator of angiogenesis. Science 1992, 258(5089):1798-1801.
32. • Lescaudron L, Peltekian E, Fontaine-Perus J, Paulin D, Zampieri M, Garcia L, Parrish E . Blood borne macrophages are essential for the triggering of muscle regeneration following muscle transplant. Neuromuscolar Disorder 1999, 9(2):72-80.
33. • Nathan CF, Karnosky ML, David JR . Alterations of macrophage functions by mediators from lymphocytes. J Exp Med 1971, 133:1356-1372.
34. • Pugh-Humphreys RG . Macrophage-neoplastic cell interactions: implications for neoplastic cell growth. FEMS Microbiol Immunol 1992, 5(5-6):289-308.
35. • Rezzani R, Rodella L, Milanesi S, Bianchi R . Immunohistochemical characterization of thymic macrophages in normal and treated rats: a differential sensitivity to cyclosporine A. Int J Exp Pathol 1996, 77:191-196.
36. • Scheider A, Franz A, Rausch-Fan X, Spittler A, Lucas T, Samorapoompichit P, Sperr W, Nitulescu G . Cytotoxic effects of dental composites, adhesive substances, compomer and cements. Dent Mater 1998, 14:429-440.
37. • Wennberg A, Mjor IA, Hensten-Pettersen A . Biological evaluation of dental restorative materials: a comparison of different test methods. J Biomed Mater Res 1983, 17:23-26
Parole Chiave
BIOCOMPATIBILITA'; BIOMATERIALI; APOPTOSI; COLTURE CELLULARI; MACROFAGI; RESINE; ODONTOIATRIA

Analisi in vivo ed in vitro della reattività biologica a biomateriali odontoiatrici

Università degli Studi di Brescia
Abstract
Si integrano competenze diverse per:
- lo studio delle superfici allo stato di polimerizzazione e dopo sterilizzazione e / o solubilizzazione
- lo studio in vitro ed in vivo della risposta cellulare a campioni posti a contatto con diversi stipiti cellulari (macrofagi, fibroblasti, osteoblasti)
Sulla base di risultanze comuni di esperimenti condotti in laboratori diversi, si intende conseguire la caratterizzazione del modello più sensibile al quale sottoporre i biomateriali da impiegare nel cavo orale <<<

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Corrado PAGANELLI Università degli Studi di BRESCIA
Obiettivo del Programma di Ricerca
Per raggiungere l'obiettivo identificato dell'analisi in vitro ed in vivo della reattività biologica a biomateriali in odontoiatria è necessario integrare e potenziare le capacità di ricerca delle singole unità nei seguenti ambiti:
- studio delle superfici allo stato di polimerizzazione e dopo sterilizzazione
- studio dei campioni dopo attacco di solubilizzazione standardizzato
Sulla base di risultanze comuni di esperimenti condotti in laboratori diversi, si intende conseguire la caratterizzazione del modello cellulare più sensibile al quale sottoporre i materiali da impiegare nel cavo orale <<<
Risultati parziali attesi
Definizione della morfologia e della struttura dei campioni da sottoporre a test nelle diverse sedi e nei diversi protocolli.Sulla base di risultanze comuni di esperimenti condotti in laboratori diversi, si otterrà la caratterizzazione delle linee cellulari più sensibili alle quali sottoporre i materiali resinosi da impiegare nel cavo orale. <<<
Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
Il cavo orale presenta delle peculiarità ampiamente descritte in letteratura per quanto attiene la valutazione della biocompatibilità dei biomateriali in particolare polimerici (1). In primo luogo la contaminazione batterica, l'escursione termica, l'applicazione di carichi ciclici sottopongono i materiali a stress difficilmente comparabili a quelli riscontrabili in altri distretti biologici (2). In secondo luogo la presenza di un forte turnover cellulare, la presenza di reattività immunitaria cellulare ed umorale spesso rendono meno chiari e / o latenti nel tempo le risposte tissutali. Infine la presenza di una manualità dell'operatore professionale e/o di igiene domiciliare, l'esposizione ad insulti chimici e/o condizioni schermanti favoriscono un potenziale rischio di solubilizzazione (2,3). L'aumento di pazienti immunocompromessi ai quali, per aumento della vita media, vengono applicati dispositivi medici incrementano le difficoltà di valutazione della biocompatibilità in sé .
Il numero di pazienti cui vengono posti in situ (per tempi lunghi) materiali alloplastici e la varietà dei materiali impiegati creano numerosissime occasioni di eventi negativi di riscontro in tempi medio lunghi (4).
Numerosi autori hanno concentrato i loro studi sulla influenza della preparazione dei campioni alle prove di biocompatibilità e sull'interazione tra materiale e terreni di coltura (5, 6).
E' evidente che il materiale che viene sottoposto a polimerizzazione in ambiente controllato (in assenza di ossigeno) produce un grado di monomero residuo diverso rispetto al materiale polimerizzato in condizioni non controllate; inoltre l'influenza delle procedure di sterilizzazione sulla formazione di un piu' alto grado di polimerizzazione è nota. Parimenti è significativa l'importanza del fenomeno di solubilizzazione in ambiente ricco di solventi, quali possono essere presenti nel cavo orale dopo spazzolamento domiciliare e/o lucidatura professionale(3,11). Il sistema di polimerizzazione più diffuso per le resine composite dentarie è la fotopolimerizzazione. Idealmente tutto il monomero dovrebbe essere convertito in polimero durante tale processo. Tuttavia, tutti i monomeri a base di dimetacrilato mostrano un certo livello di insaturazione nel prodotto finale, con un grado di conversione che va dal 55 al 75% in condizioni di irradiazione convenzionali (7,8,13). I gruppi reattivi (doppi legami) residui sono suscettibili di idrolizzazione ed ossidazione, con conseguente degradazione del materiale (7). È stato dimostrato che l'utilizzo di lampade fotopolimerizzatrici ad alta intensità può produrre un grado di conversione maggiore, con conseguenti proprietà fisiche e meccaniche superiori del materiale (12). Oltre al miglioramento di tali proprietà, vi è la necessità di ridurre la contrazione da polimerizzazione, le cui conseguenze cliniche sono rappresentate dalla comparsa di stress interni al restauro e microfessura marginale. Tuttavia, i tentativi di migliorare uno di questi aspetti comporta generalmente un peggioramento dell'altro: un elevato grado di conversione, infatti, è per lo più associato ad uno stress di contrazione da polimerizzazione superiore (7,8,13). L'impiego di un processo di polimerizzazione più lento permette il rilassamento degli stress: alcuni studi hanno evidenziato che l'utilizzo di lampade a bassa intensità migliora l'adattamento marginale e l'integrità dell'interfaccia restauro/cavità. Ciò ha portato allo sviluppo di nuove tecniche, definite "soft-start", che utilizzano bassi livelli di intensità iniziali, seguiti da un'esposizione ad alta intensità, basandosi sull'osservazione che livelli equivalenti di conversione possono essere ottenuti applicando una lampada a bassa intensità per un tempo più lungo o utilizzando intensità variabili (9).
Il successo di un restauro dipende pertanto dalla scelta accurata del materiale e dalla corretta esecuzione di ciascuna fase operatoria. In quest'ottica anche la rifinitura e la lucidatura devono essere realizzate in modo da rispettare la morfologia dentaria ed ottenere una superficie liscia, simile a quella dello smalto, che simuli l'effetto ottico di un elemento dentario naturale e che riduca la ritenzione di placca e pigmenti (16,18). Le irregolarità delle superfici dure intraorali sono infatti responsabili dell'aumento della ritenzione della placca batterica. In uno studio di Bollen et al. (15), che valutava l'irregolarità di diversi materiali duri intraorali, è stata ipotizzata l'esistenza di una soglia di rugosità superficiale per la ritenzione della placca batterica, pari a 0.2 micron, al di sotto della quale non vi sarebbe accumulo di placca. È stato dimostrato che la polimerizzazione del composito, in assenza di ossigeno, sotto una matrice in acetato di cellulosa garantisce una superficie uniforme e liscia; tuttavia, clinicamente, dopo la rimozione di tale matrice, è sempre necessario rimuovere piccoli eccessi di materiale o modificare la morfologia ottenuta (17). Le fasi di finitura e lucidatura costituiscono passaggi obbligati conclusivi per il corretto utilizzo dei materiali estetici da restauro. Durante le procedure di rifinitura, in relazione alla diversa resistenza all'abrasione della matrice organica e del rinforzante, può verificarsi la rimozione della matrice organica lasciando in superficie particelle di agente riempitivo con maggiori rischi di un suo distacco e diminuzione della capacità di resistenza all'usura (16). È stato ipotizzato che con i sistemi di lucidatura attuali non sia possibile ottenere una superficie perfettamente liscia (19). L'efficacia dei diversi trattamenti per ridurre le irregolarità è risultata materiale-dipendente: ogni materiale dentario necessita di una sua specifica modalità di trattamento allo scopo di ottenere e mantenere una superficie più liscia possibile (16). Inoltre la caratterizzazione meccanica dei materiali, in ragione dei diversi metodi di polimerizzazione, costituisce un'importante valutazione anche ai fini della biocompatibilità (7,8).
Sono state osservate reazioni biologiche a materiali, che evocano il rilascio di fattori chemioattivi e/o fattori di crescita i quali possono determinare un'imponente risposta infiammatoria immediata e cronica. In entrambi i casi è stata notata la comparsa di neutrofili, macrofagi nelle aree di tessuto che circondano il materiale (23, 26, 33). E' noto che la risposta infiammatoria immediata può essere correlata al successo del materiale (25,27), mentre la risposta infiammatoria cronica al suo fallimento (21). Il successo del materiale dovuto alla risposta infiammatoria immediata è legato a fattori angiogenetici che inducono la crescita vascolare indispensabile per riequilibrare l'omeostasi tissutale dopo l'inserimento (27). I fattori angiogenetici indotti dai biomateriali e l'influenza delle cellule infiammatorie sull'angiogenesi sono tuttora oggetto di studio da parte di numerosi ricercatori. Tra i diversi tipi cellulari coinvolti nella risposta infiammatoria, i macrofagi giocano un ruolo di estrema importanza nell'angiogenesi e nell'integrazione dei biomateriali nei tessuti (32). Essi inducono diversi fattori angiogenetici quali il fattore endoteliale di crescita vascolare (VEGF) (22), il fattore di crescita fibroblastica (bFGF) (34), l'interleuchina 8 (IL-8) (31) così come gli inibitori dell'angiogenesi stessa (vedi Tsp-1)(30). Nell'infiammazione cronica, invece, i macrofagi attivati sono responsabili dei processi coinvolti nella degradazione dei materiali (21). Diventa quindi di notevole importanza il monitoraggio della popolazione macrofagica per individuare il destino dei biomateriali e degli impianti tissutali. Nell'ambito dello studio della biocompatibilità a biomateriali odontoiatrici è quindi possibile studiare i fenomeni reattivi cellulari ed in particolare la reazione infiammatoria immediata e cronica prodotta dall'impianto di biomateriali resinosi nel tessuto sottocutaneo di ratto:
1) utilizzando parametri di valutazione della risposta biologica specifica secondo le linee guida UNI EN 30993-6: 1996.
2) valutando il coinvolgimento delle diverse sottopopolazioni macrofagiche identificabili con metodi immunoistochimici (35). E' possibile studiare i marker del metabolismo cellulare, della proliferazione cellulare e dell'apoptosi.
3) valutando alcuni attivatori e inibitori dell'angiogenesi sia "in vivo" che "in vitro". <<<