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PROGRAMMA DI RICERCA 2004

italiano - english
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Classificazione scientifico-disciplinare
Classificazione geografica
Bibliografia
Note: For the complete reference lists please see local unit proposals (B models)


Baumeister W, Grimm R, Walz J. 1999.Trends in Cell Biol., 9:81-85.

Bellon PL, Lanzavecchia S, Scatturin V. 1998. Ultramicroscopy. 72:177-186.

Bottcher B, Wynne SA, Crowther RA. 1997. Nature 386:88-91.

Burgess SA, Dover SD, Woolley DM. 1991. J. Cell Sci. 98:17-26.

Burgess SA, Walker ML, Sakakibara H, Knight PJ, Oiwa K. 2003. Nature 421:715-718.

Burgess SA. 1995. J. Mol. Biol. 250:52-63

Cantele F, Lanzavecchia S, Bellon PL. 2003. J. Struct. Biol. 141:84-92.

Carazo JM. 1992. In: Electron Tomography, Frank J. (Ed.), pp. 117–164, Plenum Press, New York.

Cole DG. 2003. Traffic 4:435-442.

Conway JF, Cheng N, Zlotnick A, Wingflield PT, Sthal SJ, Steven AC. 1997. Nature 386:91-94.

Curry AM, Rosenbaum JL. 1993. Cell Motil. Cytoskeleton 24:224-232.

Cyrklaff M, Adrian M, Dubochet J. 1990. J Electron Microsc. Tech.16:351-355.

De Rosier DJ. 1997. Nature 386; 26-27.

Dubochet J, Adrian M, Chang JJ, Homo JC, Lepault J, McDowall AW,

Schultz P. 1988. Quart. Rev. Biophys. 21:129-228.

Frank J.1992. Electron Tomography, Plenum Press, New York.

Frank J, Zhu J, Penczek P, Li Y, Srivastava S, Verschoor A, Radermacher M, Grassucci R, Lata RK, Agrawal RK. 1995. Nature 376:441-444.

Frank J. 1996. Three-dimensional electron microscopy of macromolecular assemblies. Academic Press, New York.

Frank J. 2002. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 31:303-319.
Gabashvili I, Agrawal RK, Spahn CMT, Grassucci RA, Svergun DI, Frank J, Penczek P. 2000. Cell 100:537-549.

Goodenough UW, Heuser JE. 1985. J. Cell Biol. 100:2008-2018.

Goodenough UW, Heuser JE. 1989. In: Cell Movement, vol.1:The dynein ATPases. Warner FD, Satir P, Gibbons IR. eds, Alan R. Liss Inc. N.Y., 121-140.

He W, Cowin P, Stokes DL. 2003. Science 302:109-113.

Heuser JE. 1983. J. Mol. Biol. 169:155-95.

Heuser JE. 2001. Biomedical Reviews 12:11-29.

Ibañez-Tallon I, Heintz N, Omran H. 2003. Hum. Mol. Genet. 12:R27-R35.

Johnson KA, Rosenbaum JL. 1992. J. Cell Biol. 119:1605-1611.

Lanzavecchia S, Bellon PL, Radermacher M. 1999. J. Struct. Biol. 128:152-164.

Lanzavecchia S, Bellon PL, Scatturin V. 1993. J. Microsc. 171:255-266.

Lanzavecchia S, Bellon PL, Tosoni L. 1995. Comp. Appl. Biosci. 11:373-378.

Lanzavecchia S, Lupetti P, Bellon PL, Dallai R, Rappuoli R, Telford JL. 1998. J. Struct. Biol. 121:9-18.

Lanzavecchia S, Wade RH, Ghiretti Magaldi A, Tognon G, Bellon P.L. 1999. J. Struct. Biol. 127:53-63.

Lepault J, Dubochet J.1986. Meth. Enzym. 127:719-730.

Lupetti P, Heuser J, Manetti R, Massari P, Lanzavecchia S, Bellon PL, Dallai R, Rappuoli R, Telford JL. 1996. J. Cell Biol. 133:801-807.

Lupetti P, Mencarelli C, Rosetto M, Heuser JE, Dallai R. 1998. Cell Motil. Cytoskeleton 39:303-317.

McEwen B, Frank J. 2001. Current Opinion in Neurobiology 11:594-600.

McEwen B, Marko M. 2001. J. Histochem. Cytochem. 49:553-563.

Mencarelli C, Lupetti P, Rosetto M, Mercati D, Heuser JE, Dallai R. 2001. Cell Motil. Cytoskeleton. 50:129-146.

Mitchell DR. 1995. Int. Rev. Cytol. 155:141-180.

Pazour GJ, Baker SA, Deane JA, Cole DG, Dickert BL, Rosenbaum JL,

Witman GB, Besharse JC. 2001. J. Cell Biol. 157:103-113

Pazour GJ, Dickert BL, Vucica Y, Seeley ES, Rosenbaum JL, Witman GB,

Cole D.G. 2000. J. Cell Biol. 151:709-718.

Piperno G, Mead K, Henderson S. 1996. J. Cell Biol. 133:371-379.

Porter ME. 1996. Curr. Opin Cell Biol. 8:10-17.

Qin H, Diener DR, Geimer S, Cole DG, Rosenbaum JL. 2004. J. Cell Biol. 164:255-266.

Radermacher M, Rao V, Grassucci R, Frank J, Timerman A, Fleisher S,

Wagenknecht T. 1994. J. Cell Biol. 127:411-423.

Radermacher M. 1988. J. Electron Microsc. Tech. 9:359–394.

Ranson NA, Farr GW, Roseman AM, Gowen B, Fenton WA, Horwich AL,

Saibil HR. 2001. Cell 107:869-879.

Reyrat J.-M, Lanzavecchia S, Lupetti P, de Bernard M, Pagliaccia C, Pelicic V, Charrel C, Ulivieri C, Norais N, Ji X, Cabiaux V, Papini E, Rappuoli R, Telford J.L. 1999. J. Mol. Biol. 290:459-470.

Rosenbaum JL, Cole DG, Diener DR. 1999. J Cell Biol. 144:385-388.

Rosenbaum JL, Witman GB. 2002. Nat. Mol. Cell Biol. 3:813-825

Sale WS, Goodenough UW, Heuser JE. 1985. J. Cell Biol. 101:1400-1412.

Sali A, Gaeser R, Earnest T, Baumeister W. 2003. Nature 422:216-225.

Serysheva II, Orlova EV, Chiu W, Sherman MB, Hamilton SL, van Heel M. 1995. Nature Struct. Biol. 2:18-24.

Smith EF, Yang P. 2004. Cell Motil. Cytoskeleton 57:8-17.

Tabin CJ, Vogan KJ. 2003. Genes & Development 17:1-6.

Tsitrin Y, Morton CJ, El Bez C, Paumard P, Velluz MC, Adrian M,

Dubochet J, Parker MW, Lanzavecchia S, van der Goot FG. 2002. Nature Structural Biology 9:729-733.

van Heel M. 1987. Ultramicroscopy 21:111–124.

Warner FD, Satir P. 1974. J. Cell Biol. 63:35-63.

Yang P, Diener DR, Rosenbaum JL, Sale WS. 2001. J. Cell Biol. 153:1315-1326

Yang P, Diener DR, Yang G, Pazour G, Dienes J, Agrin N, Sale W,

Kamiya R, Rosenbaum JL, Witman G. 2004. (in prep.)

Zampighi G, Kreman M, Lanzavecchia S, Turk E, Eskandari S, Zampighi L, Wright EM. 2003. J. Mol. Biol. 325:201-210
Parole Chiave
CIGLIA E FLAGELLI; BRACCIA ESTERNE DINEINA; RADIAL SPOKES; TRASPORTO INTRAFLAGELLARE; MICROSCOPIA ELETTRONICA 3D; TOMOGRAFIA ELETTRONICA

Analisi strutturale ad alta risoluzione di componenti flagellari in situ e purificati

Università degli Studi di Siena
Abstract
Il progetto è finalizzato ad ottenere modelli tridimensionali ad alta risoluzione di alcuni tra i principali componenti dell'assonema flagellare. Intendiamo focalizzare le nostre indagini strutturali sulle baraccia di dineina in situ (ODA; Outer Dynein Arms) i radial spokes isolati (RS) e le particelle purificate di trasporto intraflagellare (IFT). Questi complessi macromolecolari sono presenti negli assonemi di ciglia e flagelli della maggior parte degli eucarioti e sono indispensabili per garantirne la motilità (ODA, RS) o l'assemblaggio e il turnover (IFT). Queste strutture assumono quindi un ruolo funzionale fondamentale in ciglia e flagelli normali e sono implicate nella patogenesi delle malattie causate da difetti della motilità o del turnover di questi organelli cellulari. I nostri studi strutturali verranno effettuati utilizzando due tra i più efficienti metodi attualmente disponibili per la preparazione di materiale biologico destinato ad indagini ad alta risoluzione: il QuickFreeze-DeepEtching (QF/DE) e la Criomicroscopia Elettronica. Le micrografie ottenute mediante queste tecniche di preparazione saranno sottoposte a due differenti strategie di analisi di immagine: la tomografia elettronica di repliche metalliche per quanto riguarda lo studio delle dineine in situ, e analisi a particella singola per quel che concerne i RS e le particelle IFT isolati. Utilizzeremo come modelli di studio specie con caratteristiche vantaggiose per il nostro approccio >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Pietro LUPETTI Università degli Studi di SIENA
Obiettivo del Programma di Ricerca
L'uso delle tecniche di Quick-Freeze/Deep-Etching e di Criomicroscopia Elettronica, due tra le procedure attualmente più avanzate per la preservazione e l'osservazione di cellule e complessi molecolari, combinato con l'impiego di strategie per l'analisi di immagine quali la tomografia elettronica e l'analisi su singola particella, consentirà di ottenere modelli 3D ad alta risoluzione della struttura:

1)delle braccia di dineina - il motore molecolare per il battito flagellare - osservate in situ nell'assonema degli spermatozoi di ditteri cecidomidi, i quali presentano una serie di peculiarità che li rendono particolarmente idonei alla visualizzazione di queste strutture.

2)dei radial spokes - i complessi che controllano l'attività delle braccia di dineina - isolati dagli assonemi 9+2 dei flagelli dell'alga verde Chlamydomonas, così come dei complessi che ne costituiscono i precursori e dei radial spokes modificati presenti in alcuni ceppi mutanti di Chlamydomonas.

3)delle particelle coinvolte nell'IFT (IntraFlagellar Transport), fenomeno diffuso in tutti i tipi di ciglia e flagelli degli eucarioti e richiesto per il loro assemblaggio e mantenimento; la struttura di queste particelle è al momento completamente sconosciuta.

Risultati parziali attesi
A)Morfologia molecolare del braccio esterno di dineina in situ.
Abbiamo già effettuato alcuni studi preliminari su repliche di assonemi degli spermatozoi di Monarthropalpus flavus ottenendo una prima ricostruzione tomografica 3D. I risultati preliminari sono molto incoraggianti anche se è necessario implementare il lavoro svolto. E' stata ricostruita una regione dell'assonema corrispondente a 7 file di braccia di dineina, ciascuna con circa 25 molecole allineate. Questa è un'immagine della regione ricostruita:



Un paio di filari sono molto distorti, ma ve ne sono altri piuttosto regolari. Abbiamo selezionato i filari migliori e mediato le immagini delle braccia perché equivalenti per orientazione ed esposizione al metallo. Le immagini finali sono state segmentate per evidenziare i domini principali e la connessione con il tubulo B.



Nel corso del primo anno di progetto intendiamo implementare la tomografia degli ODA secondo gli aspetti seguenti:

1) Geometrie di raccolta. esploreremo diverse geometrie per la raccolta di immagini. L'unità di Siena si è dotata di un nuovo porta-preparato che permette sia di tiltare il campione che di ruotarlo; è quindi adatto per la tomografia a doppio asse. Per questo tipo di tomografia sono necessarie due serie di immagini dell'assonema ottenute ruotando il campione di 90° tra una serie e l'altra >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
A)Introduzione

Ciglia e flagelli degli eucarioti sono organelli deputati ad assolvere due funzioni: 1) la propulsione della cellula (es. spermatozoi, protozoi ciliati e flagellati) o del fluido sulla superficie cellulare (epiteli ciliati), e 2) una funzione sensoria, tipica delle ciglia specializzate presenti sulle cellule recettrici per stimoli chimici, meccanici o visivi; la membrana plasmatica di queste ciglia contiene specifici recettori e canali ionici.

B)Struttura dell'assonema di ciglia e flagelli

Ciglia e flagelli (i due termini sono analoghi) sono caratterizzati dalla presenza di una specializzazione citoscheletrica, l'assonema, la cui struttura consiste in 9 doppietti microtubulari disposti attorno ad un complesso centrale di 2 microtubuli singoli (struttura 9+2). Lungo ciascun doppietto tubulare sono disposte due file di dineine (braccia esterne ed interne) che interagiscono con il microtubulo adiacente.




Lo scivolamento reciproco dei tubuli promosso dalle dineine, ATPasi con funzione di motori molecolari, genera la forza meccanica necessaria per il movimento di tutte le ciglia 9+2. Il meccanismo della motilità richiede che le braccia di dineina non siano tutte contemporaneamente attive, perché questo risulterebbe nel blocco dello scivolamento tra doppietti. La dineina è regolata dai microtubuli centrali attraverso i radial spokes, che sono inseriti >>>