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INIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE

PROGRAMMA DI RICERCA 2004

italiano - english
Programmi di ricerca simili:
Classificazione scientifico-disciplinare
Classificazione brevettuale
Classificazione geografica
Bibliografia
1. Couture, M., et al., J. Biol. Chem., 1999. 274: p. 6898–6910.
2. Couture, M., S. Yeh, B.A. Wittenberg, J.B. Wittenberg, Y. Ouellet, D.L. Rousseau and M. Guertin, PNAS USA, 1999. 96: p. 11223-11228.
3. Hou, S., et al., Nature, 2000. 403: p. 540-544.
4. Arredondo-Peter, R., M.S. Hargrove, J.F. Moran, G. Sarath and R.V. Klucas, Plant Physiology, 1998. 118: p. 1121–1125.
5. Burmester, T., B. Weich, S. Reinhardt and T. Hankeln, Nature, 2000. 407: p. 520-523.
6. Trent, J.T.I., A.N. Hvitved and M.S. Hargrove, Biochemistry, 2001. 40: p. 6155-6163.
7. Arredondo-Peter, R., M.S. Hargrove, C. Sarath, J.F. Moran, J. Lohrman, J.S. Olson and R.V. Klucas, Plant Physiology, 1997. 115: p. 1259-1266.
8. Trevaskis, B., R.A. Watts, C.R. Andersson, D.J. Llewellyn, M.S. Hargrove, J.S. Olson, E.S. Dennis and W.J. Peacock, PNAS USA, 1997. 94: p. 12230–12234.
9. Hunt, P.W., R.A. Watts, B. Trevaskis, D.J. Llewelyn, J. Burnell, E.S. Dennis and W.J. Peacock, Plant Molecular Biology, 2001. 47: p. 677–692.
10. Kundu, S., S.A. Premer, J.A. Hoy, J.T.T. III and M.S. Hargrove, Biophys. J., 2003. 84: p. 3931–3940.
11. Perazzoli, M., P. Dominici, M.C.R. Puertas, E. Zago, J. Zeier, M. Sonoda, C. Lamb and M. Delledonne, Nature Structural Biology, 2004. submitted.
12. Hargrove, M.S., E.A. Brucker, B. Stec, G. Sarath, R. Arredondo-Peter, R.V. Klucas, J.S. Olson and G.N.P. Jr, Structure, 2000. 8: p. 1005–1014.
13. Hargrove, M.S., Biophysical Journal, 2000. 79: p. 2733–2738.
14. Trent, J.I. and M.S. Hargrove, J. Biol. Chem., 2002. 277: p. 19538–19545.
15. Hankeln, T.,et al., J Biol. Chem., 2002. 277: p. 29012–29017.
16. Bolognesi, M., D. Bordo, M. Rizzi, C. Tarricone and P. Ascenzi, Progress in Biophysics & Molecular Biology, 1997. 68(1): p. 29-68.
17. Perutz, M.F., TIBS, 1989. 14(2): p. 42-4.
18. Das, T.K., et al. Biol. Chem., 1999. 274(7):p. 4207-12.
19. Uno, T., et al. J. Biol. Chem., 2004. 279: p. 5886–5893.
20. Olson, J., Methods in Enzymology, 1981. 76: p. 631-651.
21. Olson, J.S. and G.N.J. Phillips, J. Biol. Chem., 1996. 271: p. 17593-17596.
22. Austin, R.H., K.W. Beeson, L. Eisenstein, H. Frauenfelder and I.C. Gunsalus, Biochemistry, 1975. 14: p. 5355-5373.
23. Henry, E.R., J.H. Sommer, J. Hofrichter and W.A. Eaton, J. Mol. Biol., 1983. 166: p. 443-451.
24. Steinbach, P.J., Biochemistry, 1991. 30: p. 3988-4001.
25. Ansari, A., C.M.Jones, E.R. Henry, J. Hofrichter and W. Eaton, Science, 1992. 256: p. 1796-1798.
26. Kleinert, T., W. Doster, H. Leyser, W. Petry, V. Schwarz and M. Settles, Biochemistry, 1998. 37: p. 717-733.
27. Ostermann, A., R. Washipky, F.G. Parak and G.U. Nienhaus, Nature, 2000. 404: p. 205-208.
28. Hofrichter, J., J.H. Sommer, E.R. henry and W.A. Eaton, PNAS USA, 1983. 80: p. 2235-2239.
29. Henry, E.R., C.M. Jones, J. Hofrichter and W.A. Eaton, Biochemistry, 1997. 36: p. 6511-6528.
30. Eaton, W.A., E.R. Henry, J. Hofrichter and A. Mozzarelli, Nature Structural Biology, 1999. 6: p. 351-358.
31. Goldbeck, R.A., S.J. Paquette and D.S. Kliger, Biophys. J., 2001. 81: p. 2919–2934.
32. Frauenfelder, H., B.H. McMahon, R.H. Austin, K. Chu and J.T. Groves, PNAS USA, 2001. 98: p. 28-30.
33. Braslavsky, S.E. and G.E. Heibel, Chemical Reviews, 1992. 92: p. 1381-1410.
34. Gensch, T. and C. Viappiani, Photochem. Photobiol. Sci., 2003. 2: p. 699–721.
35. Westrick, J.A., J.L. Goodman and K.S. Peters, Biochemistry, 1987. 26(25): p. 8313-8318.
36. Westrick, J.A., K.S. Peters, J.D. Ropp and S.G. Sligar, Biochemistry, 1990. 29(28): p. 6741-6746.
37. Westrick, J.A. and K.S. Peters, Biophys. Chem., 1990. 37: p. 73-79.
38. Norris, C.L. and K.S. Peters, Biophys.J., 1993. 65: p. 1660-1665.
39. Peters, K.S., T. Watson and T. Logan, JACS, 1992. 114: p. 4276-4278.
40. Angeloni, L. and A. Feis, Photochem. Photobiol. Sci, 2003. 2: p. pp.
41. Mozzarelli, A. and S. Bettati, Functional properties of immobilized proteins, in Advanced Functional Molecules and Polymers, H.S. Nalva, Editor. 2001, Overseas Publishers Association.
42. Bettati, S., B. Pioselli, B. Campanini, C. Viappiani and A. Mozzarelli, Protein-Doped Nanoporous Silica Gels, in Encyclopedia of Nanoscience and Nanotechnology, H.S. Nalwa, Editor. 2004, American Scientific Publishers. p. 1-23.
43. Ellerby, L., C.R. Nishida, F. Nishida, S.A. Yamanaka, B. Dunn, J.S. Valentine and J.I. Zink, Science, 1992. 255: p. 1113-1115.
44. Dave, B.C., B. Dunn, J.S. Valentine and J.I. Zink, Anal.Chem., 1994. 66: p. 1120A.
45. Shibayama, N. and S. Saigo, Journal of Molecular Biology, 1995. 251: p. 203-209.
46. Lan, E.H., B.C. Dave, J.M. Fukuto, B. Dunn, J.I. Zink and J.S. Valentine, J. Mater. Chem., 1999. 9: p. 45.
47. Shibayama, N. and S. Saigo, JACS, 1999. 121: p. 444-445.
48. Bettati, S. and A. Mozzarelli, J. Biol. Chem., 1997. 272: p. 32050-32055.
49. Das, T.K., I. Khan, D. Rousseau and J.M. Friedman, Biospectroscopy, 1999. 5: p. S64-S70.
50. Juszczak, L.J. and J.M. Friedman, J. Biol. Chem., 1999. 274: p. 30357-30360.
51. Shibayama, N. and S. Saigo, FEBS Letters, 2001. 429: p. 50-53.
52. Samuni, U., D. Dantsker, A. Ray, J.B. Wittenberg, B.A. Wittenberg, S. Dewilde, L. Moens, Y. Ouellet, M. Guertin and J.M. Friedman, J. Biol. Chem., 2003. 278: p. 27241–27250.
53. Brunner, H., A. Mayer and H. Sussner, J. Mol. Biol., 1972. 70(1): p. 153-6.
54. Strekas, T.C. and T.G. Spiro, Biochim Biophys. Acta, 1972. 263(3): p. 830-3.
55. Spiro, T.G. and X.Y. Li, in Biological Applications of Raman Spectroscopy, S.T. G., Editor. 1988, Wiley: New York. p. 1-37.
56. Marzocchi, M.P. and G. Smulevich, J Raman Spectrosc, 2003. 34(10): p. 725-736.
57. Stein, P., M. Mitchell and T.G. Spiro, JACS, 1980. 102: p. 7795-7797.
58. Hori, H. and T. Kitagawa,JACS, 1980. 102: p. 3608 - 3613.
59. Smulevich, G. and T.G. Spiro, Methods in Enzymology, 1993. 226: p. 397-408.
60. Kerr, E.A. and N. T.Yu, in Biological Applications of Raman Spectroscopy, S.T. G., Editor. 1988, Wiley: New York. p. 39-96.
61. Das, T.K., M. Couture, Y. Ouellet, M. Guertin and D.L. Rousseau, PNAS USA, 2001. 98(2): p. 479-84.
62. Vojtechovsky, J., K. Chu, J. Berendzen, R.M. Sweet and I. Schlichting, Biophys. J., 1999. 77(4): p. 2153-2174.
63. Li, X.Y. and T.G. Spiro, JACS, 1988. 110: p. 6024-6033.
64. Ray, G.B., X.Y. Li, J.A. Ibers, J.L. Sessler and T.G. Spiro, JACS, 1994. 116(1): p. 162-176.
65. Li, T.S., M.L. Quillin, G.N. Phillips and J.S. Olson, Biochemistry, 1994. 33(6): p. 1433-1446.
66. Phillips, G.N., M.L. Teodoro, T.S. Li, B. Smith and J.S. Olson, J. Phys. Chem. B, 1999. 103(42): p. 8817-8829.
67. Park, E.S. and S.G. Boxer, J. Phys. Chem. B, 2002. 106: p. 5800-5806.
68. Franzen, S., JACS, 2002. 124(44): p. 13271-13281.
69. Laverman, L.E., A. Wanat, J. Oszajca, G. Stochel, P.C. Ford and R. van Eldik, JACS, 2001. 123(2): p. 285-293.
70. Hoshino, M., L. Laverman and P.C. Ford, Coordination Chemistry Reviews, 1999. 187: p. 75-102.
71. Enemark, J.H. and R.D. Feltham, JACS, 1978. 96: p. 5002.
72. Chan, N.L., P.H. Rogers and A. Arnone, Biochemistry, 1998. 37(47): p. 16459-16464.
73. Brucker, E.A., J.S. Olson, M. Ikeda-Saito and G.N. Phillips, Proteins-Structure Function and Genetics, 1998. 30(4): p. 352-356.
74. Coyle, C.M., K.M. Vogel, T.S. Rush, P.M. Kozlowski, R. Williams, T.G. Spiro, Y. Dou, M. Ikeda-Saito, J.S. Olson and M.Z. Zgierski, Biochemistry, 2003. 42(17): p. 4896-4903.
75. Benko, B. and N.T. Yu, PNAS USA, 1983. 80(22): p. 7042-6.
76. Tsubaki, M. and N.T. Yu, Biochemistry, 1982. 21(6): p. 1140-4.
77. Vogel, K.M., P.M. Kozlowski, M.Z. Zgierski and T.G. Spiro, JACS, 1999. 121(43): p. 9915-9921.
78. Schelvis, J.P.M., S.A. Seibold, J.F. Cerda, R.M. Garavito and G.T. Babcock, J. Phys. Chem. B, 2000. 104(46): p. 10844-10850.
79. Mukai, M., Y. Ouellet, H. Ouellet, M. Guertin and S.R. Yeh, Biochemistry, 2004. 43(10): p. 2764-2770.
80. Couture, M., T. Burmester, T. Hankeln and D.L. Rousseau, J. Biol. Chem., 2001. 276(39): p. 36377-82.
Parole Chiave
EMOGLOBINE DI PIANTA NON SIMBIOTICHE; OSSIDO NITRICO; MUTAGENESI SITO DIRETTA; CRISTALLI DI PROTEINE; LASER FLASH PHOTOLYSIS; STOPPED FLOW; SPETTROSCOPIA RAMAN DI RISONANZA; CINETICHE DI REAZIONE; LEGAME DI OSSIGENO E MONOSSIDO DI CARBONIO

Aspetti strutturali e funzionali delle emoglobine non simbiotiche da Arabidopsis thaliana

Università degli Studi di Parma
Abstract
Le emoglobine (Hb) sono presenti in un'ampia varietà di organismi, dai batteri agli eucarioti unicellulari, fino alle piante e agli animali. Le emoglobine di pianta sono state classificate in simbiotiche e non simbiotiche. Le Hb non simbiotiche (nsHb) sono state scoperte di recente e si pensa siano precedenti nell'evoluzione alle più specializzate legemoglobine. Le nsHb mostrano una peculiare esacoordinazione dell'eme, risultante da due residui di istidina che legano l'atomo di Fe nel quinto e nel sesto sito di coordinazione, quest'ultimo essendo il tradizionale sito di legame per l'O2 ed altri ligandi. Nonostante la potenziale inibizione del legame con ligandi esogeni, le nsHb legano O2 ed altri ligandi con affinità molto elevate. Si conosce molto poco della funzione delle nsHb, sebbene si sia proposto il loro coinvolgimento in una o più delle seguenti vie metaboliche: i) rimozione dell'O2; ii) partecipazione in un processo di electron transfer mediante l'interazione con una flavina; iii) legame di O2, NO e CO come parte di un meccanismo sensoriale e/o di difesa; iv) legame a piccole molecole organiche e partecipazione alla sintesi di composti organici in condizioni anaerobiche.
Arabidopsis thaliana possiede due nsHb, AHb1 e AHb2. Le loro proprietà biologiche suggeriscono che possano avere differenti funzioni. AHb1 viene fortemente indotta da condizioni di ipossia, il ché suggerisce che sia una proteina indotta dallo stress. E stato proposto che AHb1 funzioni come >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Cristiano VIAPPIANI Università degli Studi di PARMA
Obiettivo del Programma di Ricerca
Il ruolo fisiologico di due emoglobine non simbiotiche da Arabidopsis thaliana, AHb1 e AHb2, è ancora sconosciuto a causa di una caratterizzazione strutturale e funzionale molto limitata. Lo scopo di questo progetto è quello di determinare proprietà cinetiche e di equilibrio di entrambe le emoglobine e di loro mutanti specifici, di caratterizzare la geometria dell'eme in funzione dello stato di ossidazione e della presenza di ligandi esogeni e, se possibile, le loro strutture tridimensionali.
AHb1 funziona come una diossigenasi, metabolizzando l'NO a nitrato. Intendiamo svolgere un'approfondita indagine dell'attività NO diossigenasica NADPH dipendente di AHb1 e determinare l'eventuale esistenza di una metAHb1 riduttasi nelle cellule delle piante. La caratterizzazione funzionale comprenderà anche la determinazione di costanti di affinità e di velocità di reazione per il legame di NO, O2 e CO ad AHb1(FeII) e AHb2(FeII). I residui coinvolti nell'esacoordinazione del Fe dell'eme saranno mutati in entrambe le proteine per chiarire, a livello molecolare, l'origine delle diverse affinità per l'O2 riportate preliminarmente e caratterizzare i cammini di accesso al sito di legame.
Questi dati verranno messi in correlazione con quelli strutturali, derivati dalle indagini spettroscopiche sulle risposte del circondario dell'eme al legame di ligandi e a mutazioni di amminoacidi. Intendiamo inoltre ottenere cristalli di entrambe le proteine e determinare la loro struttura >>>

Risultati parziali attesi
1. Ottimizzazione del sistema di espressione e purificazione di AHb1 and AHb2 per la produzione su larga scala
2. Identificazione di una metAHb1-riduttasi specifica in estratti di piante che sovraesprimono AHb1
3. Mutagenesi sito-specifica di residui nella cavità distale e prossimale di AHb1 e AHb2
4. Determinazione delle costanti di affinità per O2, NO, CO di AHb1(FeII) e AHb2(FeII) wt e identificazione di un possibile meccanismo cooperativo.
5. Caratterizzazione di velocità di legame di ligandi (CO, O2, NO) a AHb1(FeII) e AHb2(FeII) in soluzione
6. Caratterizzazione della cinetica dell'attività diossigenasica in soluzione
7. Caratterizzazione della cinetica di rebinding di CO, NO ed O2 ad AHb1(FeII) e AHb2(FeII) wt in gel di silice mediante laser flash photolysis.
8. Cristallizzazione di AHb1 e AHb2
9. Caratterizzazione di AHb1 e AHb2 nei loro stati Fe(III) e Fe(II) mediante spettroscopia Raman Risonante (RR) in soluzione.
10. Caratterizzazione di AHb1 e AHb2 in presenza di ligandi esogeni mediante RR e spettroscopia infrarossa (complessi Fe(II)-O2, Fe(III)-NO e Fe(II)-NO).
11. Informazioni sulle interazioni polari rilevanti (in particolare, ponti H) nella tasca dell'eme dalle frequenze vibrazionali dell'unità FeCO nei complessi Fe(II)-CO di AHb1 e AHb2.
12. Caratterizzazione delle reazioni successive alla fotodissociazione dei complessi con il CO di AHb1 e AHb2 mediante Laser-induced >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
La funzione di trasporto di O2 svolta dalle emoglobine (Hb) di mammifero è da tempo ben nota. Recenti scoperte hanno messo in evidenza che questa famiglia di proteine è estremamente diffusa: varietà di Hb sono presenti nei batteri, negli archeobatteri, nei protozoi, nei vertebrati e nelle piante [1-6].Le Hb da piante superiori sono state classificate in simbiotiche e non simbiotiche [1]. Le prime si ritrovano in piante capaci di partecipare ad associazione simbiotica con microorganismi della rizosfera nelle quali la loro funzione e' quella di regolare l'apporto di ossigeno ai batteri fissatori di azoto. Le Hb non simbiotiche (nsHb), scoperte piu' recentemente, si ritiene precedano nell'evoluzione le piu' specializzate leghemoglobine simbiotiche. La loro natura ubiquitaria e la loro lunga storia evolutiva suggeriscono un ruolo importante delle nsHb per la vita delle piante. Ad oggi, la loro funzione non è chiara, seppure diverse ipotesi siano state avanzate. Si è suggerito un loro ruolo nel trasporto di O2, nella detossificazione di NO e/o di composti ossigenati reattivi, oppure come sensori di O2 o altre piccole molecole che possano legarsi all'eme. Le diverse nsHbs sono espresse in modo differente con patterns complessi che variano da tessuto a tessuto, a volte in risposta a stimoli esterni [1, 7-9].Le nsHb caratterizzate fino ad adesso mostrano un'elevata affinità per O2 e una corrispondente bassa velocità di dissociazione [7] [10]. Vi sono due classi di nsHb: quelle di >>>