Vai al contenuto| Home page|

   Ti trovi in: HOME »Programmi, progetti e risultati »I progetti »PRIN - Programmi di ricerca di Rilevante Interesse Nazionale»Programma di ricerca
INIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE

PROGRAMMA DI RICERCA 2004

italiano - english
Unità di Ricerca
Programmi di ricerca simili:
Classificazione scientifico-disciplinare
Classificazione brevettuale
Classificazione geografica
Bibliografia
Aitken-Christie J, T Kozai, MAL Smith. Glossary. Pages IX-XII. In: J Aitken-Christie, T Kozai and MAL Smith, eds. Automation and Environmental Control in Plant Tissue Culture. 1995 Kluwer Academic Publishers, Dordrecht.
Arrillaga I., Lerma V. Pérez-Bermudez P., Segura J. Callus and somatic embryogenesis from cultured anthers of service tree (Sorbus domestica L.). Hortscience 1995; 30: 1078-1079.
Bapat V.A. Studies on synthetic seeds of sandalwood (Santalum album L.) and mulberry (Morus indica L.). In: Syseeds:Applications of Synthetic Seeds to Crop Improvement. K Redenbaugh (Ed.). 1993. CRC Press Inc., Boca Raton (USA).
Canhoto J.M., Cruz G.S. Induction of pollen callus in anther cultures of Feijoa sellowiana Berg. (Myrtaceae). Plant Cell Reports 1993. 13: 45-48.
Carimi F., De Pasquale F., Crescimanno F.G. Somatic embryogenesis in Citrus from styles culture. Plant Science 1995; 105 : 81-86.
Cersosimo A., Crespan M., Paludetti G., Altamura M.M. Embryogenesis, organogenesis and plant regeneration from anther culture in Vitis. Acta Horticulturae. 1990; 280: 307-314.
Falcinelli M., Piccioni E. e Standardi A., 1993. Il seme sintetico nelle piante agrarie: problemi e prospettive. Sementi Elette, Anno XXXIX, 2:3-13.
Foster TM, Lough TJ, Emerson SJ, Lee RH, Bowman JL, Forster RL, Lucas WJ. A surveillance system regulates selective entry of RNA into the shoot apex. Plant Cell. 2002. 14 (7): 1497-508
Germanà M.A. Haploidy in Citrus. In: Jain S.M., Sopory S.K., Veilleux R.E. (eds), In Vitro Haploid Production In Higher Plants, 1997, Vol. 5, pp. 195-217. Kluwer Academic Publisher, Dordrecht, The Netherlands, London.
Germanà M.A. Somatic embryogenesis and plant regeneration from anther culture of Citrus autrantium and Citrus reticulata. Biologia, Bratislava. 2003. 58/4:843-850.
Germanà M.A., Wang Y.Y., Barbagallo M.G., Iannolino G., Crescimanno F.G. Recovery of haploid and diploid plantlets from anther culture of Citrus clementina Hort. ex Tan. and Citrus reticulata Blanco. Journal of Horticultural Science 1994. 69 (3): 473-480.
Germanà M.A., Piccioni E., Standardi A. Effects of encapsulation on Citrus reticulata Blanco somatic embryos conversion. . Plant Cell Tissue Organ Cult 1999. 55, 235-237.
Germanà M.A., Crescimanno F.G., Motisi A. Factors affecting androgenesis in Citrus clementina Hort. ex Tan. Advances in Horticultural Science 2000a. 14: 43-51.
Germanà M.A., Chiancone B. Improvement of Citrus clementina Hort. ex Tan. microspore-derived embryoid induction and regeneration. Plant Cell Report 2003. 22: 181-187.
Hammerschlag F.A. Factors influencing the frequency of callus formation among cultured peach anthers. Hortscience 1983. 18 (2): 210-211.
Hidaka T., Induction of plantlets from anthers of 'Trovita' orange. J. Japan. Soc. Hort. Sci. 1984b; 53: 1-5.
Hidaka T. A ‘shuttle callus system’- application of tissue culture in Citrus. Acta Horticulturae 1995; 392: 39-48.
Hidaka T., Yamada Y., Shichijo T. Plantlet formation from anthers of Citrus aurantium L.. Proc. Int. Soc. Citriculture. 1981; 1: 153-155.
Karp A. On the current understanding of somaclonal variation. In: Oxford Surveys of Plant Molecular and Cell Biology, BJ Miflin (ed.) Oxford University Press. 1991; Vol. 7, pp. 1-58
Kochba J., Safran H. Adventive plants from ovules and nucelli in Citrus. Planta. 1972; 106: 237-245.
Kochba J., Spiegel-Roy P. Effects of culture media on embryoid formation from ovular callus of ‘Shamouti’ orange (Citrus sinensis). Z. Plannzenzucht. 1973; 69: 156-162.
Kozai T., Ting K.C. e Aitken-Christie J. Considerations for automation of micropropagation systems. Trans. of the ASAE. 1991. 35:503-517.
Knapp E., Hanzer V., Mendonca D., A. d. Camara Machado, Katinger H. and M. L. d. Camara Machado. Improved virus detection in rosaceous fruit trees in vitro. Pathogen and Microbial Contamination Management in Micropropagation, 1997b. Kluwer Academic Publishers: 23-29
Laimer da Mâchado M., Heinrich M., Hanzer V., Arthofer W., Strommer S., Paltrinieri S., Martini M., Bertaccini A., Kummert J., Davies D. Improved detection of viruses and phytoplasmas in fruit tree tissue cultures. XVIII International Symposium on Virus and Virus-like Diseases of Temperate Fruit Crops - Top Fruit Diseases, Acta Horticulturae: 550, 2001. pp. 463-469.
Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal variation: a novel source of variability from cell culture for plant improvement. Theor Appl Genet 1981; 60: 197-214.
Ling J., Iwamasa M., Nito N. Plantlet regeneration by anther culture of Calamondin (C. madurensis Lour.). Proc Sixth Intl Soc Citricult. 1988; 1: 251-256.
Manganaris GA, Economou AS, Boubourakas IN, Katis NI. Elimination of PPV and PNRSV through thermotherapy and meristem-tip culture in nectarine. Plant Cell Rep. 2003. 22 (3): 195-200.
Mauro M. C., Nef C., Fallot J. Stimulation of somatic embryogenesis and plant regeneration from anther culture of Vitis vinifera cv. Cabernet-Sauvignon. Plant Cell Reports 1986; 5: 377-380.
Mozsar J., Sule S. A rapid method for somatic embryogenesis and plant regeneration from cultured anthers of Vitis riparia. Vitis, 1994; 33: 245-246.
Murashige T. The impact of tissue culture in agriculture. In: Frontiers of Plant Tissue Culture. International Association for Plant Tissue Culture. 1978. Ed. A. Thorpe, Calgary (Canada).
Murashige T., Skoog F.A. Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. 1962; Physiol. Plant. 15: 473-497.
Nitsch J.P., Nitsch C. Haploid plants from pollen grains. Science 1969; 163: 85-87.
Pattnaik S., Chand P. K. Morphogenic response of the alginate–encapsulated axillary buds from in vitro shoot cultures of six mulberries. Plant Cell Tissue Organ Cult 2000; 60, 177-185.
Perrin M., Martin D., Joly D., Demangeat G., This P., Masson, J.E. Medium-dependent response of grapevine somatic embryogenic cells. Plant Science 2001; 161:107-116.
Piccioni E., Standardi A.,. Encapsulation of micropropagated buds of six woody species. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 1995. 42: 221-226.
Pierik R.L.M. In vitro culture of higher plants. 1987. Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht (NL).
Ratti C., G. R. G. Clover, L. I. Ward, C. Rubies-Autonell, G. E. Budge, C. M. Henry. Development of a real-time PCR assay to investigate the resistance of wheat varieties to soil-borne wheat mosaic virus. Journal of Plant Pathology, 2002. 84 (3), 191.
Redenbaugh K. Introduction. In: Synseeds: Applications of Synthetic Seeds to Crop Improvement. K. Redenbaugh (Ed.). 1993. CRC Press Inc., Boca Raton, Ca (USA):3-7.
Redenbaugh K., Slade D., Viss P., Fujii J.A. Encapsulation of somatic embryos in synthetic seed coats. Hort. Science, 1987. 22(5): 803-809.
Rubies Autonell C. and Faccioli G., Distribution of Bean Common Mosaic and Bean Yellow Mosaic Viruses in bud tips of Phaseolus vulgaris L. Phytopath medit. 1985. 24, 241-244.
Rubies Autonell C., Tècnicas de prevenciòn de fitopatias virales. Frut, 1987. 2, 18-22.
Rubies Autonell C., G. Faccioli and A. Colombarini, Detection of PVM in potato meristem tips and preliminary results on its eradication. Potato Res., 1990. 33, 142-143.
Saponari M., Savino V., Martelli G.P., La trasmissione per seme dei virus dell’olivo. Frutticoltura, 2002. 64 (4), 103-105.
Senaratna T., Dixon K., Bunn E., Touchell D. Smoke saturated water promotes somatic embryogenesis in geranium. Plant Growth Regulators 1999; 28: 95-99
Standardi A., Piccioni E. Recent perspectives on the synthetic seed technology using non-embryogenic vitro-derived explants. International Journal of Plant Sciences 1998. 159(6): 968-978.
Standardi A., Piccioni E., Micheli M.. Recent strategies in plant biotechnology micropropagation and synthetic seed. In: New Trends in Agrobiotechnology Education (Tempus-Phare CME 03066-97) (Bucharest, 15-22 March) 1999: 38-53.
Torregrosa, L. A simple and efficient method to obtain stable embryogenic cultures from anthers of Vitis vinifera L. Vitis 1998; 37: 91-92.
Parole Chiave
MORFOGENESI IN VITRO; EMBRIOGENESI SOMATICA; ORGANOGENESI; COLTURA IN VITRO; PIANTE ARBOREE MEDITERRANEE; SEME SINTETICO; RISANAMENTO; PROPAGAZIONE DELLE PIANTE; CONSERVAZIONE DEL GERMOPLASMA

MORFOGENESI IN VITRO E SEME SINTETICO COME STRUMENTO INNOVATIVO PER LA PROPAGAZIONE E CONSERVAZIONE DEL GERMOPLASMA DELLE PIANTE ARBOREE MEDITERRANEE.

Università degli Studi di Palermo
Abstract
Lo studio della morfogenesi in vitro in alcune piante arboree mediterranee, sia tramite organogenesi che per embriogenesi somatica, risulta di estremo interesse per fornire protocolli efficienti da impiegare sia per la moltiplicazione clonale di cultivar e portinnesti sani (applicazioni vivaistiche), che per la conservazione in vitro del germoplasma (possibile strategia per risolvere il problema dell'erosione della biodiversità).
Grazie alle strette interazioni tra le unità afferenti al progetto ed alle collaborazioni esterne (Dipartimento di Produzione- Sezione Ortofloroarboricoltura dell'Università della Tuscia di Viterbo, e Istituto di Genetica del C.N.R., Sez. Perugia), il presente programma di ricerca si propone, fondamentalmente, di raggiungere quattro obiettivi:
1) Messa a punto di protocolli efficienti di morfogenesi in vitro (organogenesi ed embriogenesi somatica) tramite lo studio di diversi fattori quali il genotipo, il pre-trattamento, lo stadio di sviluppo dell'espianto, lo stato fisiologico della pianta donatrice, la composizione del mezzo colturale e le condizioni di crescita, in alcune importanti specie arboree mediterranee (agrumi, vite, olivo, melograno, gelso, nespolo del Giappone, carrubo, frassino da manna, ficodindia, etc.), finalizzata a:

A) conservazione in vitro del germoplasma;
B) moltiplicazione a livello vivaistico di cultivar e portinnesti sani.

2) Verifica dell'eventuale insorgenza di >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Maria Antonietta GERMANA' Università degli Studi di PALERMO
Obiettivo del Programma di Ricerca
Il presente programma di ricerca si pone, fondamentalmente, quattro obiettivi da raggiungere grazie alle interazioni tra le unità afferenti al progetto ed alle collaborazioni esterne:
1) Messa a punto di protocolli efficienti di morfogenesi in vitro (organogenesi ed embriogenesi somatica) in alcune importanti specie arboree mediterranee, finalizzata a:
A) conservazione in vitro del germoplasma;
B) moltiplicazione a livello vivaistico di cultivar e portinnesti sani.

2) Verifica dell'eventuale insorgenza di variabilità somaclonale nelle piante rigenerate in vitro.

3) Sviluppo della tecnologia dell'incaspulamento del materiale di cui si è ottenuta la rigenerazione in vitro, in particolare:

A) ottimizzazione del protocollo per l'allestimento di capsule e di semi sintetici, con particolare riferimento allo studio della funzione trofica e protettiva del rivestimento incapsulante, facendo ricorso a materiale vegetale embriogenetico (propaguli bipolari) e/o organogenetico (propaguli unipolari) fornito dall'U. O. di Palermo;

B) individuazione di opportuni trattamenti in grado di indurre livelli soddisfacenti di ripresa vegetativa e di rizogenesi degli espianti impiegati, per l'allestimento di capsule e di semi sintetici volti, rispettivamente, alla diffusione e alla propagazione di germoplasma di particolare interesse, facendo ricorso eventualmente anche a tecniche di stoccaggio idonee a predisporre >>>

Risultati parziali attesi
Le attività sviluppate nella fase 1 consentiranno di approfondire le conoscenze riguardo ai fattori che influenzano i processi rigenerativi in vitro dei genotipi presi in considerazione. Il materiale ottenuto sarà utilizzato dall'unità di Perugia per prove relative all'incapsulamento del materiale rigenerato.Le prove svolte nella fase 2 consentiranno di valutare la validità dei protocolli utilizzati ai fini della moltiplicazione clonale di cultivar e portinnesti (applicazioni vivaistiche), e della conservazione in vitro del germoplasma (possibile strategia per risolvere il problema dell'erosione della biodiversità).Le attività connesse con la fase 3 potranno consentire l'approfondimento delle conoscenze relative alle colture in vitro dei genotipi studiati, con particolare riferimento ai processi rigenerativi (embriogenesi ed organogenesi), al comportamento dei propaguli sottoposti ad incapsulamento ed alle procedure idonee a non deprimere la loro capacità evolutiva.La possibilità individuare idonei protocolli per l'allestimento di capsule e di semi sintetici e di disporre opportuni sistemi di stoccaggio degli espianti incapsulati per facilitare la programmazione delle produzioni e semplificare la movimentazione del materiale vegetale consentirebbe di mettere a disposizione degli operatori del settore vivaistico, in tempi brevi, innovativi strumenti biotecnologici per lo scambio rapido di germoplasma tra laboratori.Le attività connesse con questa fase dovrebbero >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
Negli ultimi decenni la coltura in vitro è stata uno degli aspetti delle biotecnologie vegetali che, assieme alla biologia molecolare, ha incisivamente influito non solo nel campo del breeding, ma anche della propagazione clonale tramite micropropagazione, del risanamento e della conservazione ex situ del gemoplasma vegetale.
I progressi compiuti nel campo della coltura dei tessuti vegetali, comprendenti l'embriogenesi somatica, lo sfruttamento della variabilità somaclonale, la micropropagazione, il microinnesto, la crioconservazione delle colture cellulari embriogeniche e la selezione in vitro, sono già stati applicati ad alcune piante arboree, ma non con le enormi potenzialità in essa insite.

La necessità di fornire agli agricoltori piante con buone caratteristiche e libere da patogeni deve essere associata con efficienti tecniche di propagazione. La micropropagazione offre molti vantaggi pratici come la rapidità di ottenimento di un grande numero di piante, la produzione di piante sane ed uniformi, ed è per questo che in molti casi è divenuta una procedura di routine per molti genotipi. I costi, nella maggior parte dei casi elevati, e le tecnologie abbastanza sofisticate, hanno impedito a molti laboratori con risorse ed infrastrutture limitate di beneficiare della tecnologia della coltura di tessuti.

La conservazione della biodiversità è universalmente riconosciuta una priorità di cui tener conto nella gestione dell'ambiente e dello >>>