Vai al contenuto| Home page|

   Ti trovi in: HOME »Programmi, progetti e risultati »I progetti »PRIN - Programmi di ricerca di Rilevante Interesse Nazionale»Programma di ricerca
INIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE

PROGRAMMA DI RICERCA 2005

italiano - english
Programmi di ricerca simili:
Classificazione scientifico-disciplinare
Classificazione brevettuale
Classificazione geografica
Bibliografia
Aparicio S., et al., 2002. Whole-genome shotgun assembly and analysis of the genome of Fugu rubripes. Science, 297: 1301-1310.
Artyukhin E.N., 1995. On biogeography and relationships within the genus Acipenser. Sturg. Quart., 3: 6-8.
Bernatchez, L., 2001. The evolutionary history of brown trout (Salmo trutta L.) inferred from phylogeographic, nested clade, and mismatch analyses of mitochondrial DNA variation. Evolution, 55: 351-379.
Birstein V.J., Hanner R., Desalle R., 1997. Phylogeny of the Acipenseriformes: Cytogenetic and molecular approaches. Environ. Biol. Fish, 48:127-156.
Canapa A., Nisi Cerioni P., Barucca M., Olmo E.,. Caputo V., 2002. A centromeric satellite DNA may be involved in heterochromatin compactness in gobiid fishes Chromosome Research, 10: 297-304.
Capriglione T., 2000. Repetitive DNA as a tool to study the phylogeny of cold-blooded vertebrates. Chromosome Today, 13: 193-197.
Caputo V., Nisi Cerioni P., Splendiani A., Capriglione T., Odierna G., Olmo E., 2002. Chromosomal studies on ten species of notothenioidei fishes (Notothenioidei: Bathydraconidae, Channichthyidae, Nototheniidae). Cytogenet Genome Res, 98: 285-290).
Caputo V., Giovanotti M., Nisi Cerioni P., Caniglia M.L., Splendiani A., 2004. Genetic diversity of brown trout (Salmo trutta L., 1758) in central Italy. J. Fish. Biol., 65: 403-418.
Carvalho & Hauser, 1994. Molecular genetics and stock concept in fisheries. Rev. Fish Biol. and Fisheries, 4: 326-350.
Castro, J., Rodriguez, S., Arias, J., Sanchez, L. & Martinez, P., 1994. A population analysis of Robertsonian and Ag-NOR polymorphism in brown trout (Salmo trutta). Theor. Appl. Genet., 89: 105-111.
Deaven L.L., Van Dilla M.A., Bartholdi M.F., Carrano AV, Cram LS, Fuscoe JC, Gray JW, Hildebrand CE, Moyzis RK, Perlman J., 1986. Construction of human chromosome-specific DNA libraries from flow-sorted chromosomes. Cold Spring Harb Symp Quant Biol., 51:159-67.
Eastman J.T., 1993. Antarctic Fish Biology: Evolution in an unique environment. Academic Press, San Diego.
Fontana F., Tagliavini J., Congiu L., 2001. Sturgeon genetics and cytogenetics: recent advancements and perspectives. Genetica, 111: 359-373.
Gornung E., Mannarelli M.E., Rossi A.R., Sola L., 2004. Chromosomal evolution in Mugilidae (Pisces, Mugiliformes): FISH mapping of the (TTAGGG)n telomeric repeat in the six Mediterranean mullets. Hereditas, 140: 1-2.
Greenwood PH, Rosen DE, Weitzman SH, Myers GS, 1966. Phyletic studies of teleostean fishes, with a provisional classification of living forms. Bull Am Mus Nat Hist, 131: 339-456.
Gruetzner F., Roest Crollius H., Lutjens G., Jaillon O., Weissenbach J., Ropers H.-H., Haaf T., 2002. Four-hundred millions years of conserved synteny of human Xp and Xq genes on three Tetraodon chromosomes. Genome Research, 12: 1316-1322.
Hellmer A., Voiculescu I., Schempp W., 1991. Replication banding studies in two cyprinid fishes. Chromosoma, 100: 524-531.
Klinkhardt M., Tesche M., Greven H., 1995, Database of fish chromosomes. Westarp Wissenschaft.
Liechty M.C., Hall B.K., Scalzi J.M., Davis L.M., Caspary W.J., Hozier J.C., 1995. Mouse chromosome-specific painting probes generated from microdissected chromosomes. Mamm Genome, 6: 592-4.
Medrano L., Bernardi G., Couturier J., Dutrillaux B., Bernardi G., 1988. Chromosome banding and genome compartmentalization in fishes. Chromosoma, 96: 178-183.
Morescalchi A., Capriglione T., Lanna R., Morescalchi M.A., Odierna G., Olmo E., 1996. Genome structure in notothenioid fish from the Ross Sea. Proc. Third Meeting on Antarctic Biology, pp. 365-379.
Nanda I., Zend-Ajusch E., Shan Z., Grutzner F., Schartl M., Burt D.W., Koehler M., Fowler V.M., Goodwin G., Schneider W.J., Mizuno S., Dechant G., Haaf T., Schmid M., 2000. Conserved synteny between the chicken Z sex chromosome and humanchromosome 9 includes the male regulatory gene DMRT1: a comparative (re)view on avian sex determination. Cytogenet Cell Genet, 89: 67-78.
Nanda I., Haaf T., Schartl M., Schmid M., Burt D.W., 2002. Comparative mapping of Z-orthologous genes in vertebrates: implications fort he evolution of avian sex chromosomes. Cytogenet Genome Res, 99: 178-184.
Nelson, J. S., 1984. Fishes of the world. 2nd edition, Wiley J. & Sons, New York.
Ohno S., 1970. Evolution by gene duplication. Springer-Verlag, New York.
Phillips R.B., Konkol N.R., Reed K.M., Stein J.D., 2001. Chromosome painting supports lack of homology among sex chromosomes in Oncorhynchus, Salmo, and Salvelinus (Salmonidae). Genetica, 111: 119-123.
Phillips R.B., Matsuoka M.P., Reed K.M., 2002. Characterization of charr chromosome using fluorescence in situ hybridization. Environmental biology of fishes, 64: 223-228.
Richard F., Lombard M., Dutrillaux B., 2003. Reconstruction of the ancestral karyotype of eutherian mammals. Chromosome Research, 11: 605-618.
Robinson-Rechavi M., Marchand O., Escriva H., Laudet V. 2001b. An ancestral whole-genome duplication may not have been responsible for the abundance of duplicated fish genes. Curr Biol, 11: 458–459.
Roest Crollius H., Jaillon O., Dasilva C., Ozouf-Costaz C., Fizames C., Fischer C., Bouneau L., Billault A., Quetier F., Saurin W., Bernot A., Weissenbach J., 2000. Characterization and repeat analysis of the compact genome of the freshwater pufferfish Tetraodon nigroviridis. Genome Research, 10: 939-949.
Rossi A.R., Ungaro A., Crosetti D., Sola L., 2004. Phylogenetic analysis of Mediterranean mugilids by allozymes and 16S mt rRNA genes investigation: is the genus Liza monophyletic?" Biochem Genet, in press.
Salvadori S., Deiana A. M., Coluccia E., Milia A., Cau A., 1997. The different banding patterns produced by restriction endonuclease digestion in mitotic chromosomes of the American and European eel. Journal of Fish Biology, 50: 668 - 671.
Salvadori S., Coluccia E., Cannas R., Cau A., Deiana A. M. 2003. Replication banding in Mediterranean moray eels: chromosomal characterization and comparison. Genetica, 119: 253-258.
Scalenghe F., Turco E., Edstrom J.E., Pirrotta V., Melli M., 1981. Microdissection and cloning of DNA from a specific region of Drosophila melanogaster polytene chromosomes. Chromosoma, 82: 205-216.
Stanyon R., Yang F., Cavagna P., O’Brien P.C., Bagga M., Ferguson-Smith M.A., Wienberg J., 1999. Reciprocal chromosome painting shows that genomic rearrangment between rat and mouse proceeds ten times faster than between humans and cats. Cytogenet Cell Genet, 84: 150-155.
Taylor J.S., Van de Peer Y., Braasch I., Meyer A., 2001. Comparative genomics provides evidence for an ancient genome duplication event in fish. Phil Trans R Soc Lond B, 356: 1661–1679.
Telenius H., Carter N.P., Bebb C.E., Nordeskjolf M., Ponder B.A.J., Tunnacliffe A., 1992. Degenerate oligonucleotide-primed PCR: general amplification of target DNA by single degenerate primer. Genomics, 13: 718-725.
Thomson J.M., 1997. The Mugilidae of the world. Mem Queensl Mus, 41: 457-562.
Tortonese E., 1975. Fauna d'Italia: Pesci Ossei. II. Edizioni Calderini, Bologna.
VanDevanter D.R., Choongkittaworn N.M., Dyer K.A., Aten J., Otto P., Behler C., Bryant E.M., Rabinovitch P.S., 1994. Pure chromosome-specific PCR libraries from single sorted chromosomes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 91: 5858–5862.
Venkatesh B., 2003. Evolution and diversity of fish genome. Current Opinion in Genetics & Development, 13: 588-592.
Parole Chiave
GENOMA DEI PESCI OSSEI; CITOGENETICA MOLECOLARE; MICRODISSEZIONE CROMOSOMICA LASER; DOP-PCR; ZOO-FISH; GISH; CHROMOSOME PAINTING

Evoluzione del genoma dei pesci ossei

Università Politecnica delle Marche
Abstract
I Pesci ossei, con le loro oltre 20.000 specie finora descritte, costituiscono di gran lunga il gruppo più diversificato di Vertebrati e rivestono un ruolo fondamentale per l’economia umana (pesca, acquacoltura). Essi hanno avuto una storia evolutiva lunga e complessa, nella quale le modificazioni a carico dell’organizzazione del genoma e della struttura del cariotipo sembrano avere giocato un ruolo cruciale. Con questo progetto di ricerca ci proponiamo di dare un contributo innovativo alle conoscenze sulla struttura genomica e cariotipica dei Pesci ossei. A tal fine intendiamo isolare, impiegando tecniche di microdissezione condotte con un apparato ad effettore laser (P.A.L.M., GmbH), alcuni cromosomi o parti di essi da metafasi mitotiche di specie selezionate da cinque gruppi tassonomici di questi Vertebrati (Acipenseriformes, Anguilliformes, Salmoniformes, Mugiliformes, Perciformes) e produrre sonde da utilizzare per ottenere “chromosome painting” in esperimenti di ZOO-FISH. Ci proponiamo inoltre di costruire librerie cromosoma-specifiche mediante il DNA isolato tramite microdissezione. In tal modo sarà possibile studiare l’organizzazione di singoli cromosomi e identificare gruppi di sintenia genica, determinarne la conservatività e valutare i riarrangiamenti avvenuti, in taxa più o meno correlati, nel corso dell’evoluzione. Tali metodiche, scarsamente applicate nei pesci, sono state già ampiamente impiegate con successo nei Mammiferi >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Ettore OLMO Università Politecnica delle MARCHE
Obiettivo del Programma di Ricerca
Studio della composizione e dell’organizzazione del genoma in alcune linee filetiche di Pesci ossei (Acipenseriformi, Anguilliformi, Salmoniformi, Mugiliformi, Perciformi) con particolare riguardo a:

1. produzione di sonde per esperimenti di “chromosome painting” tramite microdissezione di cromosomi, successiva amplificazione del DNA cromosomico mediante la tecnica di DOP-PCR (Degenerate Oligonucleotide-Primed PCR) e costruzione di librerie di DNA cromosoma-specifiche;

2. individuazione di sintenie cromosomiche e valutazione del loro grado di conservazione in differenti taxa;

3. individuazione degli eventi che hanno dato origine alla poliploidia di alcuni genomi;

4. origine e differenziamento dei cromosomi sessuali;

5. ruolo di particolari sequenze di DNA (satellite, trasposoni, etc.) nei riarrangiamenti cromosomici;

6. individuazione di marcatori cromosomici utili per la caratterizzazione di popolazioni e/o specie di rilevante interesse economico e/o conservazionistico.

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
I Pesci ossei, con le loro oltre 20.000 specie finora descritte, costituiscono di gran lunga il gruppo più diversificato di Vertebrati (Nelson, 1994) e rivestono un ruolo fondamentale per l’economia umana (pesca, acquacoltura). Essi hanno avuto una storia evolutiva lunga e complessa, nella quale le modificazioni a carico dell’organizzazione del genoma e della struttura del cariotipo sembrano avere giocato un ruolo cruciale (Venkatesh, 2003). Ciò giustifica il notevole interesse scientifico per lo studio del genoma di questi Vertebrati, che ha portato recentemente al sequenziamento completo del genoma di un pesce palla (Fugu ribripes), che è il secondo Vertebrato dopo l’uomo di cui sia stato sequenziato l’intero genoma (Aparicio et al., 2002); di altre specie (Tetraodon nigroviridis, Danio rerio e Oryzas latipes) l’analisi è in via di completamento (cfr. Roest Crollius et al., 2000). Queste indagini si stanno rivelando molto utili sia per comprendere l’evoluzione di specifiche sequenze geniche, sia per analizzare la presenza, le variazioni quantitative e l’eventuale ruolo di sequenze “non geniche” quali trasposoni, DNA satelliti etc. (cfr. Capriglione, 2000; Canapa et al., 2002; Gruetzner et al., 2002; Venkatesh, 2003). Dal punto di vista applicativo, la caratterizzazione di marcatori genomici si è rivelata un fondamentale strumento per la gestione di popolazioni ittiche sfruttate dall’industria della pesca o in >>>