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PROGRAMMA DI RICERCA 2005

italiano - english
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Bibliografia
Bedinger PA, Broadwater AH, Conway JD, Hardeman KJ, Lonkides CA, Prata RTN, Rubinstain AL (1994) Molecular studies of pollen development in maize. Curr Topics Plant Physiol 12:1–14.
Bennetzen J and Ma J. (2003). The genetic colinearity of rice and other cereals on the basis of genomic sequence analysis. Curr Opin Plant Biol 6:126-133.
Delseny M. (2004). Re-evaluating the relevance of ancestral shared synteny as a tool for crop improvement. Curr. Opin. Plant Biol 7:126-131.
Devos KM, Beales J, Nagamura Y, Sasaki T. (1999) Arabidopsis-rice: will colinearity allow gene prediction across the eudicot-monocot divide? Genome Res. 9:825-829.
Dubcovsky, J., W. Ramakrishna, P. J. SanMiguel, C. S. Busso, L. L. Yan et al., 2001 Comparative sequence analysis of collinear barley and rice bacterial artificial chromosomes. Plant Physiol. 125: 1342–1353.
Feng Q, et al. (2002). Sequence and analysis of rice chromosome 4. Nature. 420:316-320.
Feuillet C and Keller B (1999). High gene density is conserved at syntenic loci of small and large grass genomes. Proc Natl Acad Sci U S A. 96: 8265-8270.
Feuillet C. and Keller B. (2002). Comparative Genomics in the Grass Family: Molecular Characterization of Grass Genome Structure and Evolution Ann Bot 2002 89: 3-10.
Fink R, Gatti E, Gianfranceschi L, Gallavotti A, Isaac PG, Sari-Gorla M, Pè ME (2001). Localization and fine mapping of gaMS-1, a male gametophytic mutant of maize. Sex Plant Reprod 14:95–99.
Fu H, Dooner HK. (2002) Intraspecific violation of genetic colinearity and its implications in maize. Proc Natl Acad Sci U S A. 99:9573-9578.
Goff SA et al. (2002) A draft sequence of the rice genome (Oryza sativa L. ssp. japonica). Science. 296:92-100.
Hardison RC. (2000). Conserved noncoding sequences are reliable guides to regulatory elements. Trends Genet. 16:369-372.
Inada DC, Bashir A, Lee C, Thomas BC, Ko C, Goff SA, Freeling M. (2003) Conserved noncoding sequences in the grasses. Genome Res. 13:2030-2041.
Lai J, Ma J, Swigonova Z, Ramakrishna W, Linton E, Llaca V, Tanyolac B, Park YJ, Jeong OY, Bennetzen JL, Messing J. (2004) Gene loss and movement in the maize genome. Genome Res. 14:1924-1931.
Landi P, Sanguineti MC, Salvi S, Giuliani S, Bellotti M, Maccaferri M, Conti S, and Tuberosa R. (2005) Validation and characterization of a major QTL affecting leaf ABA concentration in maize. Mol. Breed. 15:291-303.
Martienssen RA, Rabinowicz PD, O'Shaughnessy A, McCombie WR. (2004) Sequencing the maize genome. Curr Opin Plant Biol. 7:102-107.
Messing J, Bharti AK, Karlowski WM, Gundlach H, Kim HR, Yu Y, Wei F, Fuks G, Soderlund CA, Mayer KF, Wing RA. (2004) Sequence composition and genome organization of maize. Proc Natl Acad Sci U S A. 101:14349-14354.
Moore G, Devos KM, Wang Z and Gale MD. (1995). Grasses, line up and form a circle. Curr. Biol. 5:737-739.
O'-Sullivan DM, Ripoll PJ, Rodgers M, Edwards-KJ (2001) A maize bacterial artificial chromosome (BAC) library from the European flint inbred line F2. Theor. Appl. Genet. 103: 425-432
Palmer LE, Rabinowicz PD, O'Shaughnessy AL, Balija VS, Nascimento LU, Dike S, de la Bastide M, Martienssen RA, McCombie WR. (2003) Maize genome sequencing by methylation filtration. Science. 302:2115-2117.
Pflieger S, Lefebvre V, Causse M (2001) The candidate gene approach in plant genetics: a review. Mol Breeding 7: 275-291.
Pozzi C, di Pietro D, Halas G, Roig C, Salamini F. (2003). Integration of a barley (Hordeum vulgare) molecular linkage map with the position of genetic loci hosting 29 developmental mutants. Heredity. 90:390-396.
Pozzi C, Faccioli P, Terzi V, Stanca AM, Cerioli S, Castiglioni P, Fink R, Capone R, Muller KJ, Bossinger G, Rohde W, Salamini F. (2000). Genetics of mutations affecting the development of a barley floral bract. Genetics. 154:1335-1346.
Ramakrishna W, Bennetzen JL (2003). Genomic colinearity as a tool for plant gene isolation. Methods Mol Biol. 236:109-22.
Roig C, Pozzi C, Santi L, Muller J, Wang Y, Stile MR, Rossini L, Stanca M, Salamini F. Genetics of barley hodded suppression. (2004) Genetics, 167:439-448.
Salse J, Piegu B, Cooke R, Delseny M. (2002) Synteny between Arabidopsis thaliana and rice at the genome level: a tool to identify conservation in the ongoing rice genome sequencing project. Nucleic Acids Res. 30:2316-2328.
Salvi S, Talame V, Sanguineti MC, Tuberosa R. (2004). Development of a TILLING resource in barley. Proceedings Plant GEMs 3. Lyon, 22-25 September 2004, p. 16.
Salvi S. and Tuberosa R. (2005) To clone or not to clone plant QTLs: present and future challenges. Trends Plant Sci. (in press).
Salvi S., Sponza G, Morgante M, Fengler K, Meeley R, Ananiev E, Svitashev S, Bruggemann E, Niu X, Li B, Hainey CF, Rafalski A, Tingey SV, Tomes D, Miao G-H, Phillips RL, Tuberosa R (2005). The maize QTL Vgt1 corresponds to a ca. 2.7-kb non-coding region upstream of an Ap2-like gene. 47th Annual Maize Meeting, Lake Geneva (WI, USA), 10-13 March 2005, Talk #8.
SanMiguel P, Tikhonov A, Jin YK, Motchoulskaia N, Zakharov D, Melake-Berhan A, Springer PS, Edwards KJ, Lee M, Avramova Z, Bennetzen JL. (1996) Nested retrotransposons in the intergenic regions of the maize genome. Science 274: 765–768.
Sari-Gorla M, Ferrario S, Villa M, Pè ME (1996). gaMS-1: A gametophytic male sterile mutant in maize. Sex Plant Reprod 9: 216-220.
Sharp R, (2002) Interaction with ethylene: changing views on the role of ABA in root and shoot growth responses to water stress. Plant Cell Env 25:211-222.
Song R, Llaca V, Messing J. (2002). Mosaic organization of orthologous sequences in grass genomes. Genome Res. 12:1549-1555.
Sorrells ME, et al (2003) Comparative DNA sequence analysis of wheat and rice genomes. Genome Res. 2003 13:1818-1827.
Swigonova Z, Bennetzen JL, Messing J. (2005) Structure and Evolution of the r/b Chromosomal Regions in Rice, Maize and Sorghum. Genetics 169:891-906.
Tarchini R, Biddle P, Wineland R, Tingey S, Rafalski A. (2000). The complete sequence of 340 kb of DNA around the rice Adh1-Adh2 region reveals interrupted colinearity with maize chromosome. Plant Cell. 12:381-391.
Tuberosa R (2004). Molecular approaches to unravel the genetic basis of water use efficiency. In: Bacon M.A. (Ed.), Water use efficiency in plant biology. Blackwell, Oxford, 228-301.
Tuberosa R, Sanguineti MC, Landi P, Salvi S, Casarini E, Conti S (1998) RFLP mapping of quantitative trait loci controlling abscisic acid concentration in leaves of drought-stressed maize (Zea mays L.). Theor. Appl. Genet. 97: 744-755.
Tuberosa R, Salvi S, Sanguineti MC, Landi P, Maccaferri M, Conti S (2002) Mapping QTLs regulating morpho-physiological traits and yield: case studies, shortcomings and perspectives in drought-stressed maize. Ann Bot 89: 941-963.
Van Buuren ML, Salvi S., Morgante M., Serhani B.,Tuberosa R. (2002). Comparative genomic mapping between a 4 cM region flanking DREB1 in Arabidopsis thaliana and maize. Plant Mol Biol 48:741-750.
Van de poele K, Saeys Y, Simillion C, Raes J, Van De Peer Y. (2002) The automatic detection of homologous regions (ADHoRe) and its application to microcolinearity between Arabidopsis and rice. Genome Res. 12:1792-1801
Whitelaw CA et al. (2003) Enrichment of gene-coding sequences in maize by genome filtration. Science. 302:2118-2120.
Yu J et al (2002). A draft sequence of the rice genome (Oryza sativa L. ssp indica). Science 296:79-92.
Zeevaart JAD, Creelman RA (1988) Metabolism and physiology of abscisic acid. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology 39: 439-473.
Ziegler KE, Ashman B. (1994) Popcorn. In: Hallauer, A.R. (ed.) Specialty corns. Iowa, CRC Press. p. 189-223.
Parole Chiave
SINTENIA; ORYZA SATIVA; ZEA MAYS; HORDEUM VULGARE; GENE CANDIDATO; SEQUENZIAMENTO DEL GENOMA; BIOINFORMATICA; QTL; MUTANTI DELLO SVILUPPO

Analisi di macro- e micro-sintenia tra cereali per l'identificazione di geni di importanza agronomica

Università degli Studi di Bologna
Abstract
La conservazione di un riconoscibile ordine cromosomico dei geni (sintenia) tra specie filogeneticamente vicine fornisce l'opportunità di utilizzare specie a genoma semplice per facilitare il clonaggio di geni di interesse in specie coltivate a genoma complesso. Tra i cereali, la specie a genoma più semplice (440 Mb) è il riso (Oryza sativa) e per questo è stata scelta come modello. Il recente ottenimento della sequenza dell'intero genoma di riso ha notevolmente aumentato il potenziale impatto sulla genomica dei cereali di un maggiore utilizzo delle informazioni di sintenia.
Questo progetto si propone di utilizzare le relazioni di sintenia tra riso, orzo e mais, al fine di mappare geneticamente e fisicamente una serie di geni di importanza agronomica in orzo e mais, e porre le basi per il loro clonaggio. Forte enfasi verrà data all'identificazione di geni candidati, che verranno identificati sulla sequenza annotata di riso sintenica a quella del locus oggetto di studio nella specie originale. Il progetto si propone anche di sequenziare una porzione del genoma di mais (ca. 2 Mb), ed eventualmente di una più breve sequenza corrispondente di orzo. Oltre a consentire l'identificazione di geni candidati ai loci oggetto di questo studio, l'ottenimento di tale informazione di sequenza permetterà un'estesa analisi di microsintenia riso-orzo-mais e, più in generale, fornirà informazioni sull'organizzazione e sull'evoluzione del genoma dei cereali.

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Roberto TUBEROSA Università degli Studi di BOLOGNA
Obiettivo del Programma di Ricerca
Il presente progetto, utilizzando una serie di attività tra loro integrate, si pone come obiettivo la mappatura di loci di interesse agronomico di orzo e mais in relazione a geni candidati ed ove possible in relazione alla mappa fisica. Le attività verteranno attorno all'utilizzo della sintenia tra cereali, che consentirà di semplificare e migliorare le fasi di mappatura genetica e fisica e l'identificazione di geni candidati. Attraverso una significativa attività di sequenziamento, il progetto contribuirà a chiarire la struttura del genoma di mais e di orzo; tale attività consentirà, a sua volta, di migliorare le conoscenze riguardanti la sintenia tra riso, orzo e mais per le regioni sede dei geni bersaglio e fornirà informazioni sull'organizzazione e sull'evoluzione del genoma dei cereali.

I loci oggetto di studio, per i quali si procederà ad una mappatura genetica fine (risoluzione pari almeno ad 1 cM) ed eventualmente alla mappatura fisica, sono:
• root-ABA1, un QTL che influenza la struttura dell'apparato radicale e controlla l'accumulo di acido abscissico nella foglia (L-ABA) in mais (Tuberosa et al., 1998; Landi et al., 2005);
• i mutanti gametofitici di mais GaMS1 (Sari-Gorla et al., 1996) e Ga-1 (Ziegler e Ashman, 1994);
• 2-3 mutanti dello sviluppo di orzo, scelti tra una lista iniziale di 40 mutanti già mappati in orzo (Pozzi et al., 2000, 2003).

Due fra i loci di mais oggetto di studio, root-ABA1 e GaMS1 >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
SINTENIA E SUO UTILIZZO.
Sebbene esista notevoli differenze in numero cromosomico e contenuto in DNA tra le specie della famiglia delle Poaceae, esse mostrano una elevata conservazione nella struttura del genoma per quanto concerne l'ordine lineare dei geni sui cromosomi. Tale caratteristica è stata osservata inizialmente nel corso di studi di mappatura genica comparativa, in cui le stesse sonde RFLP a copia singola venivano mappate su popolazione di mappa di specie diverse (bibliografia riassunta in Gale and Devos, 1998). Il confronto basato sulla disponibilità di campioni di sequenze genomiche ha recentemente dimostrato che le differenze in dimensioni del genoma sono attribuibili in gran parte al diverso contenuto e livello di duplicazione di sequenze trasponibili nelle regioni intergeniche (SanMiguel et al., 1996). Queste osservazioni hanno portato allo proposta di un modello di lavoro, definito del clonaggio posizionale comparativo (Feuillet and Keller, 1999) o clonaggio posizionale basato su piccoli "surrogate genomes" (Bennetzen and Ma, 2003), in cui i geni oggetto di studio sono mappati approssimativamente nella specie coltivata a genoma complesso, ma le lunghe e costose fasi di chromosome walking sono svolte in una specie imparentata, a genoma più semplice. Pur con le dovute cautele, tali considerazioni si applicano anche al clonaggio di QTL (Salvi and Tuberosa, 2005). Per i cereali, la specie modello è il riso, grazie al suo piccolo genoma (ca. 440 Mb), gi >>>