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PROGRAMMA DI RICERCA 2005

italiano - english
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Classificazione geografica
Bibliografia
Asada K (1999) The water-water cycle in chloroplasts: Scavenging of active oxygens and dissipation of excess photons. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 50:601-639.
Cochard H. 2002. Xylem embolism and drought-induced stomatal closure in maize. Planta 215: 466-471.
Corelli Grappadelli L., Giovannini D., Magnanini E., Ravaglia G. Gas exchanges of genetically dwarf peach trees. Conferenza 'Control of Photosynthesis in Tree Species' Bordeaux 27-29 Agosto 1995:13.
Del Rio C., Garcia-Fernàndez M.D., Caballero J.M., 2000. Variability and classification of olive cultivars by their vigor. Proceedings of IV International Symposium on Olive Growing. Bari, 25-30 settembre (in corso di stampa).
Eckert M, Biela A, Siefritz F, Kaldenhoff R (1999) New aspects of plant aquaporin regulation and specificity. J Exp Bot 50:1541-1545.
Goldschmidt, E.E., Harpaz A., Gal S., Rabber D., Gelb E. 1994. Simulation of fruitlet thinning effects in citrus by a dynamic growth model. Proceedings of the International Society of Citriculture: Volume 1 Taxonomy, breeding and varieties, rootstocks and propagation, plant physiology and ecology: 7th International Citrus Congress, Acireale, Italy, 8-13 March, 1992. pp. 515-519.
Grossman Y.L., DeJong T.M. 1995. Maximum vegetative growth potential and seasonal patterns of resource dynamics during peach growth. Annals Botany 76: 473-485.
Harmer SL, Hogenesch JB, Straume M, Chang H-S, Han B, Zhu T, Wang X, Kreps JA, Kay SA (2000) Orchestrated transcription of key pathways in Arabidopsis by the circadian clock. Science 290:2110–2113.
Henzler T, Ye Q, Steudle E (2004) Oxidative gating of water channels (aquaporins) in Chara by hydroxyl radicals. Plant Cell Environ 27:1184-1195.
Ho L.C., Grange R.I., Shaw A.F.,1989. Source-sink regulation. In: Trasport of Photoassimilates. Eds. D.A. Baker and J.A. Milburn. Longman Scientific and Technical, Harlow, Essex, UK, pp. 306-344.
Jackson RB, Sperry JS, Dawson TE (2000) Root water uptake and transport: using physiological processes in global predictions. Trends Plant Sci 5:482–488.
Javot H, Maurel C (2002) The role of aquaporins in root water uptake. Ann Bot-London 90:301-313.
Koerner, C. 2003. Carbon limitation in trees. Journal of Ecology, 91: 4-17.
Lemaire, G., Millard P. 1999. An ecophysiological approach to modelling the source fluxes in competing plants. Journal of Experimental Botany, 50:15-28
Lo Gullo M.A., Trifilò P. & Raimondo F. (2000) Hydraulic architecture and water relations of Spartium junceum branches affected by a mycoplasm disease. Plant Cell & Environment 23, 1079-1088.
Lo Gullo MA, Nardini A, Salleo S, Tyree MT. 1998. Changes in root hydraulic conductance (KR) of Olea oleaster seedlings following drought stress and irrigation. New Phytologist 140: 25-31.
Long SP, Humphries S, Falkowski PG (1994) Photoinhibition of photosynthesis in nature. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 45:633-662.
Luu DT, Maurel C (2005) Aquaporins in a challenging environment: molecular gears for adjusting plant water status. Plant Cell Environ 28:85-96.
Maurel C, Chrispeels MJ (2001) Aquaporins. A molecular entry into plant water relations. Plant Physiology 125: 135-138.
Medina, C.L., Souza R.P., Machado E.C., Ribeiro R.B., Silva J.A.B. 2002. Photosynthetic response of Citrus grown under reflective aluminized polypropilene shading nets. Scientia Horticulturae, 95:115-125.
Nardini A, Salleo S, Andri S. 2005. Circadian regulation of leaf hydraulic conductance in sunflower (Helianthus annuus L. cv Margot). Plant, Cell and Environment 28: in press.
Nishiyama Y, Yamamoto H, Allakhverdiev SI, Inaba M, Yokota A, Murata N (2001) Oxidative stress inhibits the repair of photodamage to the photosynthetic machinery. EMBO J 20:5587-5594.
Osmond CB (1994) What is photoinhibition? Some insights from comparisons of shade and sun plants. In: Photoinhibition of photosynthesis: from molecular mechanisms to the field (Edited by: Baker NR, Bowyer JR). Oxford, BIOS Scientific Publishers:1-24.
Pannelli G., Famiani F., Rugini E., 1992. Effects of the change on ploidy levels on anatomicals, cytological, reproductive, growth perform and polyamine contents, in mutants og gamma irradiated olive plants. Acta Horticulturae, 317: 209-218.
Poorter L. 1999. Growth responses of 15 rain-forest tree species to a light gradient: the relative importance of morphological and physiological traits. Functional Ecology vol.13, issue 3: 396-403
Popma J. & Bongers F. 1988. The effect of canopy gaps on growth and morphology of seedlings of rain forest species. Oecologia 75: 625–632.
Romani A, Baldi A, Tattini M, Vincieri FF. 1994. Extraction, purification procedures and HPLC-RI analysis of carbohydrates in olive (Olea europea L.) plants. Chromatographia 39: 35-39
Rugini E., Pannelli G., Ceccarelli M., Muganu M., 1996. Isolation of triploid and tetraploid olive (Olea europaea L.) plants from mixoploid cv Frantoio and Leccino mutants by in vivo and in vitro selection. Plant Breeding, 115: 23-27.
Ryan MG, Yoder BJ. 1997. Hydraulic limits to tree height and tree growth. BioScience 47: 235-242.
Salleo S, Lo Gullo MA, Trifilò P, Nardini A. 2004. New evidence for a role of vessel-associated cells and phloem in the rapid refilling of cavitated stems of Laurus nobilis L. Plant, Cell and Environment 27: 1064-1075.
Secchi F, Lovisolo C, Schubert A (2004) Isolation of MIP genes from olive (Olea europaea L.). Proc. 13th Internat Workshop on Plant Membrane Biology. Montpellier (F) 06-10/VII/2004: 96.
Siefritz F, Tyree MT, Lovisolo C, Schubert A, Kaldenhoff R (2002) PIP1 Plasma Membrane Aquaporins in Tobacco: From Cellular Effects to the Function in Plants. Plant Cell 14:869-876.
Sofo A, Dichio B, Xiloyannis C, Masia A (2005) Antioxidant defences in olive trees during drought stress: changes in activity of some antioxidant enzymes. Funct Plant Biol 32:45-53.
Sorrentino, G., Cerio L., Alvino A. 1997. Effect of shading and air temperature on leaf photosynthesis, florescence and growth in lily plants. Scientia Horticulturae, 69:259-273.
Sperry J.S. (2000) Hydraulic constraints on plant gas exchange. Agricultural and Forest Meteorology 201, 13-23.
Takahashi S, Tamashiro A , Sakihama Y, Yamamoto Y, Kawamitsu Y, Yamasaki H (2002) High-susceptibility of photosynthesis to photoinhibition in the tropical plant Ficus microcarpa L. f. cv. Golden Leaves. BMC Plant Biology 2:2.
Tattini M, Gucci R, Romani A, Baldi A, Everard JD. 1996. Changes in non-structural carbohydrates in olive (Olea europaea L.) leaves during root zone salinity stress. Physiologia Plantarum 98:117-124
Tattini M., Gucci R. Coradeschi MA, Ponzio C, Everard JD. (1995). Growth gas exchange and ion content in Olea europaea plants under salinity stress and subsequent relief. Physiologia Plantarum 95: 203-210
Tous J., Romero A., Plana J., Baiges F., 1999. Planting density trial with "arbequina" olive cultivar in Catalonia (Spain). Acta Hort. 474: 177-179.
Trifilò P., Nardini A., Lo Gullo M.A. & Salleo S. (2003) Vein cavitation and stomatal behaviour of sunflower (Helianthus annuus) leaves under water limitation. Physiologia Plantarum 119, 409-417.
Tsuda M, Tyree MT. 2000. Plant hydraulic conductance measured by the high pressure flow meter in crop plants. Journal of Experimental Botany 51: 823-828.
Tyree M.T. & Sperry J.S. (1988) Do woody plants operate near the point of catastrophic xylem dysfunction caused by dynamic water stress answers from a model. Plant Physiology 88, 574-580.
Tyree MT, Nardini A, Salleo S, Sack L, El Omari B. 2005. The dependence of leaf hydraulic conductance on irradiance during HPFM measurements: any role for stomatal response? Journal of Experimental Botany 56: 737-744.
Tyree, M.T., Zimmerman, M.H. 2002. Xylem Structure and the Ascent of Sap. Springer-Verlag, Berlin.
Zwieniecki MA, Melcher PJ, Holbrook NM. 2001. Hydrogel control of xylem hydraulic resistance in plants. Science 291: 1059-1062.
Parole Chiave
OLIVO; VIGORE; ARCHITETTURA IDRAULICA; ACQUAPORINE; ATTIVITÀ DEL CAMBIO; RIPARTIZIONE; BILANCIO DEL CARBONIO; MODELLI DI SIMULAZIONE; SCAMBI GASSOSI

STUDIO DEI MECCANISMI DI CONTROLLO DELLA CRESCITA VEGETATIVA IN GENOTIPI DI OLIVO (OLEA EUROPAEA L.) CONTRADDISTINTI DA DIVERSO VIGORE

Università degli Studi di Palermo
Abstract
Obiettivo del programma di ricerca proposto è lo studio degli aspetti morfologici, isto-anatomici, genetico-molecolari ed ecofisiologici dei processi coinvolti nel controllo della crescita vegetativa in olivo. Oggetto di ricerca saranno due cloni della cultivar "Leccino" contraddistinti da potenziale di crescita vegetativa opposto: il "Leccino Minerva", ed il "Leccino dwarf", quest'ultimo caratterizzato da ridotto vigore. Inoltre, allo scopo di verificare il livello di controllo esercitato dall'ambiente sui fattori di regolazione della crescita, i suddetti aspetti saranno studiati in due regimi radiativi differenziati.
L'articolazione della ricerca proposta trova le sue motivazioni nella importanza, rilevata in numerose specie, dei meccanismi di regolazione delle relazioni idriche nel controllo dei processi di crescita e di ripartizione delle risorse. A tale fine, si pone come centrale la integrazione tra le informazioni che verranno acquisite nello studio dell'architettura idraulica della pianta, e dei suoi sistemi di regolazione molecolare, con quelle relative alla produttività primaria ed alla ripartizione degli assimilati e dei nutrienti nei diversi organi della pianta. L'integrazione tra tali livelli di conoscenza sarà resa possibile anche in virtù dell'applicazione di tecniche di indagine di carattere fortemente innovativo che offrono la possibilità di pervenire alla stima "in vivo" di importanti parametri delle relazioni idriche delle piante con elevata >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Tiziano CARUSO Università degli Studi di PALERMO
Obiettivo del Programma di Ricerca
In olivicoltura, la necessità di pervenire ad una drastica riduzione dei costi colturali e ad un rapido ammortamento dei capitali investiti pone l'esigenza di meccanizzare integralmente le operazioni di raccolta e di potatura. La disponibilità di piante di taglia contenuta, costituisce il presupposto fondamentale per la intensificazione degli impianti e per l'impiego di macchine semoventi di elevata efficienza operativa. Mentre in diverse specie arboree da frutto al controllo della mole della pianta si è pervenuto attraverso l'impiego di portinnesti, nel caso dell'olivo, sembra che la via da percorrere sia quella di utilizzare piante autoradicate di cultivar contraddistinte da basso potenziale di crescita vegetativa.
A tal fine, in questi ultimi anni, genotipi caratterizzati da modesto vigore sono stati destinati ad impianti intensivi gestiti mediante l'uso di macchine "scavallatrici".
Attualmente, nell'ambito del germoplasma olivicolo mondiale, sono pochi i genotipi riconosciuti adattabili a sistemi colturali intensivi integralmente meccanizzabili, per cui l'adozione su larga scala di tali genotipi porterebbe ad un impoverimento della piattaforma varietale, con un conseguente appiattimento delle tipologie di prodotto offerto.
In questo senso, diviene importante estendere le attività di studio del germoplasma anche al pool di caratteri legati alla crescita vegetativa e, nell'ambito di programmi di miglioramento genetico, selezionare anche tenendo conto >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
Come per gran parte delle specie arboree da frutto decidue delle zone temperate, anche per l'olivo, pianta sempreverde, capace di valorizzare ambienti siccitosi, la problematica connessa con il contenimento della mole dell'albero è divenuta oggetto di attività di ricerca presso importanti istituzione scientifiche dei Paesi che si affacciano sul Mar Mediterraneo (Del Rio et al., 2000). La possibilità di disporre di genotipi con ridotta crescita vegetativa dell'albero rappresenta, infatti, uno strumento indispensabile per incoraggiare un'attività produttiva che da anni evidenzia segni di debolezza. Sulla base di quanto avvenuto in frutticoltura, anche per l'olivo si rende necessario rinnovare gli impianti, intensificandoli, per consentire la riduzione del periodo improduttivo, aumentare le produzioni unitarie e, in funzione della destinazione del prodotto, meccanizzare integralmente o, almeno, agevolare la raccolta (Tous et al., 1999). Per rilanciare lo sviluppo dell'olivicoltura diviene, pertanto, indispensabile disporre di cultivar caratterizzate da modesta crescita vegetativa e rapida messa a frutto.
Recentemente, ai fini della scelta varietale, l'attenzione si è spostata maggiormente sui suddetti caratteri piuttosto che sulla produttività e sulla resa in olio, tanto che l'introduzione dell'olivicoltura in nuovi Paesi, avviene attraverso cultivar, quali "Arbequina", "Koroneiki" e "Arbosana", in passato considerate di secondaria importanza sia dal punto di vista della >>>