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PROGRAMMA DI RICERCA 2006

italiano - english
Programmi di ricerca simili:
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Classificazione brevettuale
Classificazione geografica
Bibliografia
Assadian O. and Stanek G. (2002). Theobald Smith - the discoverer of ticks as vectors of disease. Wien Klin Wochenschr, 114 (13-14): 479-481.

Adam KMG, Blewett DA (1978) A serological survey for Babesia in cattle in Scotland. II. The occurrence of antibody in the population and the distribution of infected herds. Ann Trop Med Parasitol 72: 417-428

Aeschlimann A, Brossard M, Quenet G (1975). Contribution a la connaissance des piroplasmes de Suisse. Acta Trop. 32: 281-289

Bose R., Jorgensen W.K., Dalgliesh R.J., Friendhoff K.T. & De Vos A.J. (1995). Current state and future trends in the diagnosis of babesiosis. Vet. Parasitol., 57: 61–74.

Bouattour A, Darghouth MA (1996). First report of Babesia divergens in Tunisia. Vet. Parasitol., 63: 161-165

Canas E, de Alarcon A, Regordan C, Viciana P. (1992). Babesiosis in an immunocompetent patient. Rev. Clin. Espan., 190(1):45.

Chauvin A., L’Hostis M., Valentin A., Precigout E., Cesbron-Zeggane N. & Gorenflot A. (1995). Babesia divergens: an ELISA with soluble parasite antigen for monitoring the epidemiology of bovine babesiosis. Parasite, 2, 257–262.

Christensson DA, Thorburn MA (1987). Age distribution of naturally occurring acute babesiosis in cattle in Sweden. Acta Vet Scand 28, 373-379

Denes E, Rogez JP, Darde ML, Weinbreck P. (1999). Management of Babesia divergens babesiosis without a complete course of quinine treatment. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 18: 672-673

Donnelly J, Joyner LP, Crossman PJ (1972). The incidence of Babesia divergens infection in a herd of cattle as measured by the indirect immunofluorescent antibody test. Res. Vet. Sci., 13: 511-514

Duh D, Petrovec M, Bidovec A, Avsic-Zupanc T. (2005). Cervids as Babesia hosts, Slovenia. Emerg. Infect. Dis., 11: 1121-1123

Edelhofer R, Muller A, Schuh M, Obritzhauser W, Kanout A.( 2004). Differentiation of Babesia bigemina, B. bovis, B. divergens and B. major by Western blotting--first report of B. bovis in Austrian cattle. Parasitol Res., 92: 433-435.

Egeli AK (1996). Babesiosis in a six-day-old calf. Vet Rec 139: 344-345

Fameree L, Cotteleer C, Antoine H. (1977). Bovine babesiosis in Belgium, an invasive and little known anthrozoonosis. Influence of animal babsiosis on human health. Rev. Med. Liege. 1977 Jun 15;32(12):383-390

Gray J., von Stendingk L.V., Granstrom M. (2002). " Zoonotic babesiosis". Int. J. Med. Microbiol., 291(suppl. 33): 108-111.

Gray JS, Harte LN (1985). An estimation of the prevalence and economic importance of clinical bovine babesiosis in the Republic of Ireland. Ir. Vet. J., 39: 75-78

Herwaldt B, Persing DH, Precigout EA, Goff WL, Mathiesen DA, Taylor PW, Eberhard ML, Gorenflot AF. (1996). A fatal case of babesiosis in Missouri. Identification of another piroplasm that infects humans. Ann Int. Med., 124: 643-650

Herwaldt BL, Caccio S, Gherlinzoni F, Aspock H, Slemenda SB, Piccaluga P, Martinelli G, Edelhofer R, Hollenstein U, Poletti G, Pampiglione S, Loschenberger K, Tura S, Pieniazek NJ (2003). Molecular characterization of a non-Babesia divergens organism causing zoonotic babesiosis in Europe. Emerg. Infect. Dis., 9: 942-948

Hinaidy HK (1981a). Die Babesiose des Rindes in Österreich. I. Verbreitung und Vorkommen. Wien Tierärztl Monatsschr 68:52-57

Hinaidy HK (1981b). Die Babesiose des Rindes in Österreich. II Untersuchung von Blutproben natürlich erkrankter Rinder Wien Tierärztl Monatsschr, 68:188-191

Hirata H, Yokoyama N, Xuan X, Fujisaki K, Suzuki N, Igarashi I. (2005 ). Cloning of a novel Babesia equi gene encoding a 158-kilodalton protein useful for serological diagnosis. Clin Diagn Lab Immunol., 12: 334-8.

Hoare CA (1980). Comparative aspects of human babesiosis. Trans R Soc Trop Med Hyg 74, 143-148

Holman PJ, Waldrup KA, Wagner GG. (1988). In vitro cultivation of a Babesia isolated from a white-tailed deer (Odocoileus virginianus). J. Parasitol., 74: 111-115

Holman PJ, Frerichs WM, Chieves L, Wagner GG. (1993). Culture confirmation of the carrier status of Babesia caballi-infected horses. J. Clin. Microbiol. 31: 698-701

Holman PJ, Becu T, Bakos E, Polledo G, Cruz D, Wagner GG (1998). Babesia equi field isolates cultured from horse blood using a microcentrifuge method. J. Parasitol., 84: 696-699

Hunfeld KP, Lambert A, Kampen H, Albert S, Epe C, Brade V, Tenter AM. (2002). Seroprevalence of Babesia infections in humans exposed to ticks in midwestern Germany. J. Clin. Microbiol., 40: 2431-2436

Kjemtrup AM, Thomford J, Robinson T, Conrad PA (2000). Phylogenetic relationships of human and wildlife piroplasm isolates in the western unites states inferred from the 18S nuclear small subunit RNA gene. Parasitology, 120: 487-493

Kjemtrup AM, Conrad PA (2000). Human babesiosis: An emerging tick-borne diseases. Int J Paras 30: 1323-1337

Langton C, Gray JS, Waters PF, Holman PJ. (2003). Naturally acquired babesiosis in a reindeer (Rangifer tarandus tarandus) herd in Great Britain. Parasitol. Res., 89: 194–198

L'Hostis M, Chauvin A, Valentin A, Marchand A, Gorenflot A (1995). Large scale survey of bovine babesiosis due to Babesia divergens in France. Vet. Rec., 14: 36-38

L'Hostis M, Chauvin A (1999). Babesia divergens in France: descriptive and analytical epidemiology. Parassitologia 41(suppl):59-62

Malandrin L., L’Hostis M., Chauvin A. (2004) Isolation of Babesia divergens from carrier cattle blood using in vitro culture. Vet. Res., 35: 131-139

Molloy J.B., Bowles P.M., Bock R.E., Turton J.A., Katsande T.C., Katende J.M., Mabikacheche L.G., Waldron S.J., Blight G.W. & Dalgliesh R.J. (1998a). Evaluation of an ELISA for detection of antibodies to Babesia bovis in cattle in Australia and Zimbabwe. Prev. Vet.. Med., 33: 59–67.

Molloy J.B., Bowles P.M., Jeston P.J., Bruyeres A.G., Bowden J.M., Bock R.E., Jorgensen W.K., Blight G.W. & Dalgliesh R.J. (1998b). Development of an ELISA for detection of antibodies to Babesia bigemina in cattle in Australia. Parasitol. Res., 84: 651–656.

Persing DH, Herwaldt BL, Glaser C, Lane RS, Thomford JW, Mathiesen D, Krause PJ, Phillip DF, Conrad PA (1995). Infection with a babesia–like organism in northern California. New England J. Med., 332: 298-303

Ristic M, Lewis GE (1977). Babesia in man and wild and laboratory-adapted mammals. In: Kreier JP(Ed) Parasitic Protozoa, Vol 4, Academic Press, NY, 53-76

Schreuder BE, Van Wijk C (1984). Een uitbraak van babesiosis in Oostelijk Flevoland. Tijdschr Diergeneeskd 109: 549-553

Schuster FL (2002). Cultivation of Babesia and Babesia-Like Blood Parasites: Agents of an Emerging Zoonotic Disease. Clin. Microbiol. Rev., 15: 365-373

Skrabalo Z, Deanovic Z. (1957). Piroplasmosis in man; report of a case. Doc. Med. Geogr. Trop., 9(1): 11-16

Taylor SM (1983). Assessment of prevalence of clinical babesiosis in cattle in Northern Ireland. Vet. Rec. 112: 247-250

Telford S.R., Gorenflot A., Brasseur P., Spielman A. (1993). Babesial infections in humans and wildlife. In: Creier J.P. (Ed) Parasitic protozoa., Vol. 5, Academic Press, San Diego California, 1-47.

Uhnoo I, Cars O, Christensson D, Nystrom-Rosander C. (1992). First documented case of human babesiosis in Sweden. Scand. J. Infect. Dis., 24: 541-547

Tsuji M, Wei Q, Zamoto A, Morita C, Arai S, Shiota T, Fujimagari M, Itagaki A, Fujita H, Ishihara C (2001). Human babesiosis in Japan: isolation of Babesia microti-like parasites from an asymptomatic transfusion donor and from a rodent from an area where babesiosis is endemic. J Clin Microbiol 39: 2178-2183

White DJ, Talarico J, Chang HG, Birkhead GS, Heimberger T, Morse DL (1998). Human babesiosis in New York State: review of 139 hospitalized cases and analysis of prognostic factors. Arch. Intern. Med., 158: 2149-2154

Wilson LB, Chowning WM (1904). Studies in Pyroplasmosis hominis (“spotted fever” or “Tick fever” of the Rocky Mountains. Journal of Infectious Diseases, 1: 31-57
Parole Chiave
BABESIOSI, BABESIA, DIAGNOSI, IMMUNOFLUORESCENZA INDIRETTA (IFI), ELISA, WESTERN BLOTTING, ANTICORPI MONOCLONALI, BABESIA DIVERGENS, ZOONOSI

BABESIOSI DEI RUMINANTI: COME RISOLVERE I PROBLEMI DIAGNOSTICI

Università degli Studi di Padova
Abstract
Le babesiosi sono malattie parassitarie sostenute da emoprotozoi del genere Babesia trasmessi dalle zecche dure. Le infezioni da Babesia sono diffuse in tutto il mondo sia negli animali da reddito che da compagnia.
Le infezioni da Babesia sono, oggi, anche un problema in sanità pubblica con oltre 300 casi nell'uomo.
Negli ultimi anni, in Italia, molti fattori (aumento di ungulati selvatici, modificazione delle condizioni climatico-ambientali, aumento, nell’uomo, degli stati immunodepressivi, incremento della promiscuità tra animali domestici e selvatici, aumento di persone che si avvicinano ad ambienti “naturali” dove sono presenti le zecche) sarebbero alla base dell'andamento "emergente" delle babesiosi in sanità pubblica.
La loro crescente importanza ci pone di fronte alla necessità di fornire risposte certe, come una diagnosi affidabile in tempi rapidi.
Tradizionalmente la diagnosi di babesiosi si basa sugli aspetti anamnestici e clinici e sull'esecuzione di strisci di sangue e di gocce spesse e successiva colorazione. L'identificazione microscopica dei parassiti richiede tuttavia un certo grado di parassitemia e notevole esperienza.
Una tecnica diagnostica utilizzabile è la PCR che consente di amplificare il DNA del parassita che può quindi essere sequenziato e confrontato con le sequenze di DNA presenti in letteratura. Ma la PCR ha limiti di applicabilità su larga scala e non può sostituire la sierologia >>>

Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Mario Pietrobelli Università degli Studi di PADOVA
Obiettivo del Programma di Ricerca
La ricerca si propone di colmare un importante carenza nella diagnosi della babesiosi animale, in particolare nei ruminanti, e umana, sostenuta da Babesia divergens, specie potenzialmente zoonosica, mettendo a punto tecniche diagnostiche attualmente non disponibili in commercio che possano essere di uso pratico per l’esecuzione di indagini epidemiologiche e per attivare eventuali servizi diagnostici.
Si perseguirà inoltre l’obiettivo di ottenere una fotografia nitida e precisa del grado di circolazione di B. divergens all’interno della popolazione di ruminanti (domestici e selvatici) e di valutarne l’importanza sia relativamente all’impatto economico che al rischio zoonosico.

Tale obiettivo generale può essere schematizzato nei seguenti obiettivi specifici:
1. preparazione dell’antigene sia in vitro che in vivo;
2. messa a punto di tecniche sierologiche (IFI, ELISA, Western Blotting) per B. divergens;
3. indagine epidemiologica su campioni rappresentativi delle aree oggetto di studio con utilizzo dei test sierologici messi a punto;
4. indagine filogenetica sui campioni positivi;
5. infezione sperimentale in bovini per la valutazione dell’efficienza delle prove sierologiche e lo studio della cinetica anticorpale.

Durante tutta la ricerca si perseguirà inoltre l’obiettivo di intensificare al massimo la collaborazione tra le Unità Operative (UUOO) di Bologna, Padova e Roma cercando di utilizzare in modo >>>

Durata
24 mesi
Base di partenza scientifica nazionale o internazionale
Le babesiosi sono malattie parassitarie sostenute da emoprotozoi intraeritrocitari del genere Babesia (Apicomplexa, Piroplasmida) la cui trasmissione è assicurata da artropodi ematofagi rappresentati da zecche dure (Acarina, Ixodidae) appartenenti a diversi generi: Boophilus, Dermacentor, Haemaphysalis, Hyalomma, Ixodes e Rhipicephalus.
Il termine Babesia deriva da Victor Babes, che nel 1888 identificò il protozoo negli eritrociti di bovini colpiti da febbre ed emoglobinuria. Nel 1893, Smith e Kilbourne scoprirono che il protozoo veniva trasmesso da zecche ed era responsabile della febbre del Texas nei bovini (Assadian e Stanek, 2002).
Le infezioni da Babesia spp. sono diffuse in tutto il mondo ed in particolare in Africa, Asia, Americhe, dove costituiscono ancora oggi un grave problema sanitario e rappresentano uno dei maggiori ostacoli allo sviluppo della zootecnia; nei Paesi europei a clima temperato (in particolare Spagna, Portogallo, Francia, Italia) le babesiosi sono diffuse sia negli animali da reddito che in quelli da compagnia.
Le diverse specie di Babesia possono interessare numerosi animali domestici e selvatici; in particolare: bovini (B. bigemina, B. bovis, B. divergens e B. major), ovini e caprini (B. motasi e B. ovis), equini (B. caballi e B. equi), suini (B. perroncitoi e B. trautmanni), canidi (B. canis e B. gibsoni), felidi (B. felis), roditori (B. microti) e ungulati selvatici (B. capreoli e B. odocoilei).
La trasmissione di >>>