Contenuto
Ti trovi in: HOME »Programmi, progetti e risultati »I progetti »PRIN - Programmi di ricerca di Rilevante Interesse Nazionale»Programma di ricercaINIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE
PROGRAMMA DI RICERCA 2006
italiano - english
Unità di Ricerca
Programmi di ricerca simili:
- 1 - GENOMICA FUNZIONALE IN GENOTIPI DI PIOPPO BIANCO SOTTOPOSTI A STRESS ABIOTICI
- 2 - Approcci genomici avanzati per migliorare la stabilità della produzione in mais
- 3 - Stress del reticolo endoplasmico: un potenziale nuovo meccanismo di danno cellulare nel diabete.
- 4 - Sviluppo di metodologie innovative per lo studio della risposta metabolica a stress abiotici da parte di piante normali ed a struttura ormonale geneticamente modificata.
- 5 - L'ozono come strumento per lo studio dello stress biotico ed abiotico nelle piante: analogie e divergenze nelle risposte di compensazione e difesa, inducibilità crociata e protezione crociata
- 6 - L’innesto in orticoltura: basi biofisiologiche, riflessi sulla coltura e sulle caratteristiche qualitative del prodotto.
- 7 - DIALOGO TRA ORGANELLI NELLE RISPOSTE DI DIFESA AGLI STRESS OSSIDATIVI E NELLA MORTE CELLULARE PROGRAMMATA NELLE PIANTE
- 8 - Risposta allo stress in Streptococcus thermophilus: aspetti genetici, fisiologici, ecologici e tecnologici
- 9 - Meccanismi molecolari di risposta allo stress ossidativo cellulare.
- 10 - Benessere animale, salute, biodiversità: effetti del gene candidato NR31C (Recettore dei Glucocorticoidi) in avicoltura.
Classificazione scientifico-disciplinare
- Area scientifico disciplinare: Scienze agrarie e veterinarie
- Area scientifico disciplinare: Scienze biologiche
Classificazione brevettuale
- CHEMISTRY; METALLURGY
- BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- MICRO-ORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF (biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators, containing micro-organisms, viruses, microbial fungi, enzymes, fermentates or substances produced by or extracted from micro-organisms or animal material A01N63/00; food compositions A21, A23; medicinal preparations A61K; chemical aspects of, or use of materials for, bandages, dressings, absorbent pads or surgical articles A61L; fertilisers C05); PROPAGATING, PRESERVING OR MAINTAINING MICRO-ORGANISMS (preservation of living parts of humans or animals A01N1/02); MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA (micro-biological testing media C12Q)
- TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE (settling tanks, filtering, e.g. sand filters or screening devices, B01D)
- TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE (separation in general B01D; special arrangements on waterborne vessels of installations for treating water, waste water or sewage, e.g. for producing fresh water, B63J; adding materials to water to prevent corrosion C23F; treating radioactively-contaminated liquids G21F9/04; regeneration of reactants for recirculation into processes, see the relevant places for the processes)
- BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
Classificazione geografica
- Regione: Emilia Romagna
Bibliografia
1. Hillel, D., Rosenzweig, C., 2002. Desertification in relation to climate variability and change. Adv. Agron. 77, 1-38.2. Andersen, P.P., et al. 1999. World food prospects: critical issues for the early twenty-first century, in Food Policy Report, IFPRI, Washington D.C.
3. Blum A. , Jordan, WR, Arkin GF, 1997 Sorghum root morphogenesis and growth II. Manifestation of heterosis. Crop. Sci. 17: 153
4. Duvick, D.N., 1977. Genetic rates of gain in hybrid maize yields during the past 40 years. Maydica 22, 187-196.
5. Duvick, D.N., 1984. In: Fehr, W.R. (Ed.), Genetic Contributions to Yield Gains of Five Major Crop Plants, CSSA Special Publication no. 7, Crop Science Society of America, Madison, WI, USA, pp. 15-47.
6. Duvick, D.N., 1992. Genetic contributions to advances in yield of U.S. maize. Maydica 37, 69-79.
7. Briggs, S.P., 1998. Plant genomics: more than food for thought. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 1986-1988.
8. Cassman, K.G., 1999. Ecological intensification of cereal production systems: yield potential, soil quality, and precision agriculture. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 5952-5959.
9. Tollenaar, M., Lee, E.A., 2002. Yield potential, yield stability and stress tolerance in maize. Field Crops Res. 75, 161-169.
10. DuPlessis D.P., Dijkhuis F.J. The influence of time lag between pollen shedding and silking on the yield of maize. South African J of Agric Sci 10: 667-674 (1967)
11. Eldmeades G.O., et al. In Westgate ME, Boote KJ eds. Physiology and modeling kernel set in maize. CSSA Special Pubblication No.29 Madison,WI: CSSA 43-73 (2000a)
12. Bolanos J., Edmeades G.O. The importance of the anthesis-silking interval in breeding for drought tolerance in tropical maize. Field Crop Res 48: 65-80 (1996)
13. Andrade F.H., et al. Kernel number determination in maize. Crop Sci 39:453-459 (1999)
14. Banziger et al., Breeding for drought and nitrogen stress tolerance in maize. From theory to practice. Mexico D.F. CYMMIT 2000
15. Boyer J.S. Plant productivity and environment. Science 218: 444-448 (1982)
16. Ingram J., Bartels D. The molecular basis of dehydration tolerance in plant. Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 47: 377-403 (1996)
17. Zinselmeier C., et al. The use of gene expression profiling to dissect the stress sensitivity of reproductive development in maize. Field Crops Res 75: 111-121 (2002).
18. Thiery L, et al. Phospholipase D is a negative regulator of proline biosynthesis in Arabidopsis thaliana. Biol Chem. 2004 279:14812-8 .
19. Baker J, Steele C, and Dure L 1988 Sequence and chracterisation of 6 Lea proteins and their genes from cotton. Plant Mol. Biol. 11. 277-91.
20. Close T.J. Dehydrins: emergence of a biochemical role of a family of plant dehydration proteins Physiol Plant 97: 795-803 (1996)
21. Kononowicz AK,et al. Regulation of the Osmotin Gene Promoter. Plant Cell. 1992 4:513-524.
22. Yoshiba Y, et al. Regulation of levels of proline as an osmolyte in plants under water stress. Plant Cell Physiol. 1997 38:1095-102.
23. Uno Y, et al. Arabidopsis basic leucine zipper transcription factors involved in abscissic acid-dependent signal transduction pathway under drought and high salinity conditions. PNAS 97: 11632-11637 (2000)
24. Leung J, Giraudat J. Abscissic acid signal trasduction. Annual Rev Plant Physiol and Plant Mol Biol 49: 199-222 (1998)
25. Giraudat J. Abscisic acid signaling. Curr Opin Cell Biol. 1995 Apr;7(2):232-8.
26. Landi, P., et al. Validation and characterization of a major QTL affecting leaf ABA concentration in maize. Molecular breeding : new strategies in plant improvement. 2005, 15, 291-303.
27. Sun Y et al., utilizing gene expression profiles to investigate maize response to drought and cold stress. In: 1999 Proceedings of the 54th Annual corn and sorghum research conference.
28. Zinselmeier C., et al. (1999) Starch and the control of kernel number in maize at low water potential. Plant Physiol 121: 25-36.
29.Andjelkovic V., Thompson R. Changes in gene expression in maize kernel in response to water and salt stress. Plant Cell Rep 25: 71-79 (2006).
30. Costa P., et al. Water-deficit responsive proteins in maritime pine. Plant Mol Biol 38: 587-596 (1998)
31. Moons A, et al. An abscisic-acid- and salt-stressresponsive rice cDNA from a novel plant gene family, Planta 202 (1997) 443-454.
32. Salekdeh G.H., et al. Proteomic analysis of rice leaves during drought stress and recovery, Proteomics 2 (2002) 1131-1145.
33. Rey P., et al. A novel thioredoxin-like protein located in the chloroplast is induced by water deficit in Solanum tuberosum L. plants, Plant J. 13 (1998) 97-107.
34. Leymarie J.,et al. Two-dimensional protein patterns of Arabidopsis wild-type and auxin insensitive mutants, axr1, axr2, reveal interactions between drought and hormonal responses, Plant Cell Physiol. 37 (1996) 966-975.
35. Weaver L.M., et al. Chloroplast targeted ERD1 protein declines but its mRNA increaseds durino senescence in Arabidopsis. Plant Physiol 131: 568-582 (2003)
36. Riccardi F., et al. Deciphering genetic variation of proteome responses to water deficit in maize leaves. Plant Physiol and Biochem 42: 1003-1011 (2004).
37. Tjus S E, et al Active oxygen produced during selective excitation of photosystem I is damaging not only to photosystem I, but also to photosystem II. Plant Physiology 2001; (125): 2007-2015.
38. Niyogi K K. Photoprotection revisited: genetic and molecular approaches. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1999;50:333-359.
39. Powles S B. Photoinhibition of photosynthesis induced by visible light. Annu. Rev. Plant Physiol. 1984; 35:14-44.
40. Aro E M, Virgin I, Andersson B. Photoinhibition of photosystem II. Inactivation, protein damage and turnover. Biochim. Biophys. Acta 1993;1143:113-34.
41. Horton P, Ruban A, Walters R G. Regulation of light harvesting in green plants. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 1996;47: 655-684.
42. Havaux M., et al. Vitamin E protects against photoinhibition and photooxidative stress in Arabidopsis thaliana. Plant Cell 2005;17: 3451-3469.
43. Muller-Moule P, et al. Zeaxanthin deficiency enhances the high light sensitivity of an ascorbate-deficient mutant of Arabidopsis. Plant Physiol 2003;133:748-760.
44. Foyer C H, Lelandais M, Kunert K J. Photooxidative stress in plants. Physiol. Plant. 1994;92:696-717.
45. Ogawa K, et al 1995 Attachment of Cu Zn superoxide dismutase to thylakoid membranes at the site of superoxide generation (PSI) in spinach chloroplasts: detection by immuno-gold labeling after rapid freezing and substitution method. Plant Cell Physiol. 1994;36:565-73.
46. Langlois-Meurinne,-M; et al. 2005. Pathogen-responsive expression of glycosyltransferase genes UGT73B3 and UGT73B5 is necessary for resistance to Pseudomonas syringae pv tomato in Arabidopsis. Plant Physiol. 2005;139:1890-1901
47. Liu-FuLai; Jensen,-C-R; Andersen,-M-N, 2005. A review of drought adaptation in crop plants: changes in vegetative and reproductive physiology induced by ABA-based chemical signals. Aust J Agric Res. 2005; 56:1245-1252
48. Moghaieb,-R-E-A; et al. 2006 Characterization of salt tolerance in ectoine-transformed tobacco plants (Nicotiana tabaccum): photosynthesis, osmotic adjustment, and nitrogen partitioning. Plant,-Cell Environ. 2006; 29:173-182
49. Rossel,-J-B;et al. 2006 A mutation affecting ASCORBATE PEROXIDASE 2 gene expression reveals a link between responses to high light and drought tolerance. Plant Cell Environ 2006; 29:269-281
50. Schor-Fumbarov,-T; et al 2005 Characterization and expression of a metallothionein gene in the aquatic fern Azolla filiculoides under heavy metal stress. Planta-. 2005; 223:69-76
51. Shilpi-Mahajan; Narendra-Tuteja, 2005. Cold, salinity and drought stresses: an overview. Arch Biochem Bioph 2005; 444:139-158
52. Zhao-FengYun; et al. 2006. Expression of yeast SOD2 in transgenic rice results in increased salt tolerance. Plant Sci. 2006; 170(2): 216-224
Parole Chiave
STRESS IDRICO, MAIS TRANSGENICO, IBRIDI DI MAIS, VALUTAZIONI AGRONOMICHE, ESPRESSIONE GENICA, PROTEOMICA, FOTOSINTESISostenibilità ambientale delle colture transgeniche: il caso dello stress idrico in mais
Università degli Studi di ParmaAbstract
La sostenibilità ambientale delle principale colture agrarie sta diventando assieme ai fattori di redditività uno dei parametri su cui si misura la competitività dell’agricoltura moderna.Infatti l’uso estremo delle risorse naturali, di cui l’uso dell’acqua è un caso paradigmatico, coinvolge le scelte programmatiche di fondo dello sviluppo economico di un paese di cui l’agricoltura è una parte strategicamente ed economicamente molto rilevante.
Sempre per le risorse idriche ad esempio il risparmio delle medesime in agricoltura è necessario per far fronte a:
·un maggiore uso per l’uomo
·un maggiore uso industriale
·il bisogno di mantenere scorte sufficienti.
In campo agricolo colture ad alta produttività e media redditività come il mais sono strategiche poiché coinvolgono l’alimentazione umana, quella animale e le produzioni industriali (amidi, oli).
Parlando di mais si riferisce anche come commodity per FFP (Food, Feed, and Processing) intendendo appunto questa polivalenza.
Tuttavia il ciclo di crescita del mais, ristretto ai soli mesi primaverili ed estivi, è caratterizzato da una elevata richiesta di acqua, anche se il progresso genetico ha migliorato diverse caratteristiche di adattabilità ambientale ed esistono importanti esperienze di coltivazione del mais in condizioni di deficit idrico o addirittura di coltivazioni a secco.
La introduzione di colture di mais transgeniche è stata progettata e auspicata da >>>
Coordinatore Scientifico del Programma di Ricerca
Nelson Marmiroli Università degli Studi di PARMAObiettivo del Programma di Ricerca
Il meccanismo delle notifiche delle piante transgeniche utilizzabili per la coltivazione e come FFP (Food, Feed and Processing) è tale per cui vengono fornite informazioni relativamente alla natura molecolare del transgene e al comportamento del medesimo in prove diverse in ambienti diversi di cui però non sono definite le condizioni soprattutto per quanto concerne il livello di stress. Sarebbe invece rilevante conoscere il comportamento del transgene e della intera pianta in condizioni misurabili di stress in quanto è noto che la risposta allo stress può influenzare anche la espressione di fattori di rilevanza agronomica, oltre a quelli tipicamente adattativi e di sopravvivenza.Per il mais lo stress idrico è senza dubbio il più rilevante parametro ambientale dato il periodo in cui la pianta completa il suo ciclo vitale e date le esigenze idriche di una pianta a così rapido accrescimento. Il consumo idrico nell’allevamento del mais è quindi un fattore di costo ambientale ed economico di primaria importanza, per cui una riduzione del medesimo appare fondamentale per il futuro.
Se si vuole raggiungere tale obiettivo occorre lavorare su materiali selezionati per ridotto fabbisogno idrico e/o aumentata tolleranza allo stress idrico. E’ da considerare anche che la resistenza al freddo, che consente di anticipare le semine, alla fine si traduce in un minor consumo idrico in quanto aumenta la durata del ciclo di crescita che così si svolge in condizioni di minore >>>



