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INIZIO_TESTO_DA_INDICIZZARE

UNITA' DI RICERCA

italiano - english
Bibliografia
1. M. Stefani, C. M. Dobson (2003) Protein aggregation and aggregate toxicity: new insights into protein folding, misfolding diseases and biological evolution. J. Mol. Med. 81:678-699.
2. D. J. Selkoe (2003) Folding protein in fatal ways. Nature 426: 900-904.
3. H. G. Hansma, K. Kasuya, E. Orudjev (2004) Atomic force microscopy imaging and pulling of nucleic acids. Curr. Opin. Struc. Biol. 14: 380-385.
4. R. Jansen, W. Dzwolak, R. Winter (2005) Amyloidogenic self-assembly of insulin aggregates probed by high resolution atomic force microscopy. Biophys. J. 88:1344-1353.
5. A. Relini, C. Canale, S. Torrassa, R. Rolandi, A. Gliozzi, C. Rosano, M. Bolognesi, G. Plakoutsi, M. Bucciantini, F. Chiti, M. Stefani. (2004) Monitoring the process of HypF fibrillization and liposome permeabilization by protofibrils. J. Mol. Biol. 338:943-957.
6. M. Calamai, C. Canale, A. Relini, M. Stefani, F. Chiti, C. M. Dobson (2005). Reversal of amyloid formation provides evidence for a hierarchical assembly process. J. Mol. Biol. 346:603-616.
7. A. Relini, R. Rolandi, F. Ciuchi, P. Mariani (1996). Molecular order in self-assembled multilayers of stearic acid. Thin Solid Films 284-285:216-219.
8. A. Relini, S. Sottini, S. Zuccotti, M. Bolognesi, A. Gliozzi, R. Rolandi (2003) Measurement of the surface free energy of streptavidin crystals by atomic force microscopy. Langmuir 19:2908-2912.
9. A. Relini. R. Rolandi, M. Bolognesi, A. Gliozzi, M. Aboudan, G. Merlini, V. Bellotti. (2004) Ultrastructural organization of ex-vivo amyloid fibrils formed by the apolipoprotein A-I Leu174Ser variant: an atomic force microscopy study. Biochim. Biophys. Acta 1690:33-41.
10. G. Marcon, G. Plakoutsi, C. Canale, A. Relini, N. Taddei, C. M. Dobson, G. Ramponi, F. Chiti. (2005) Amyloid formation from HypF-N under conditions in which the protein is initially in its native state. J. Mol. Biol. 347:323-335.
11. A. Piccini, C. Russo, A. Gliozzi, A. Relini, A. Vitali, R. Borghi, L. Giliberto, A. Armirotti, C. D’Arrigo, A. Bachi, A. Cattaneo, C. Canale, S. Torrassa, T. C. Saido, W. Markesberry, P. Gambetti, M. Tabaton (2005) Beta-amyloid is different in normal aging and in Alzheimer disease. J. Biol. Chem. 280:34186-34192.
12. G. Soldi, F. Bemporad, S. Torrassa, A. Relini, M. Ramazzotti, N. Taddei, F. Chiti (2005) Amyloid formation of a protein in the absence of unfolding and destabilisation of the native state. Biophys. J. 89:4234-4244.
13. A. Relini, C. Canale, S. De Stefano, R. Rolandi, S. Giorgetti, M. Stoppini, A. Rossi, F. Fogolari, A. Corazza, G. Esposito, A. Gliozzi, V. Bellotti (2006) Collagen plays an active role in the aggregation of beta2-microglobulin under physio-pathological conditions of dialysis-related amyloidosis. J. Biol. Chem., in press; doi 10.1074/jbc.M513827200.
14. J. Floege, M. Ketteler (2001) Beta2-microglobulin derived amyloidosis: an update. Kidney Int. 59:164-171.
15. Floege, J. and Ehlerding, G. (1996) Beta2-microglobulin associated amyloidosis. Nephron 72:9-26.
16. Kad, N. M., Thomson, N. H., Smith, D. P., Smith D. A., and Radford, S. E. (2001) Beta2-microglobulin and its deamidated variant N17D form amyloid fibrils with a range of morphologies in vitro. J. Mol. Biol. 313:559-571.
17. W. S. Gosal, I. J. Morten, E. W. Hewitt, D. A. Smith, N. H. Thomson, S. E. Radford (2005) Competing pathways determine fibril morphology in the self-assembly of beta2-microglobulin into amyloid. J. Mol. Biol. 351:850–864.
18. Morgan, C. J., Gelfand, M., Atreya, C., and Miranker, A. D. (2001) Kidney dialysis-associated amyloidosis: a molecular role for copper in fiber formation. J. Mol. Biol. 309:339-345.
19. Yamamoto, S., Yamaguchi, I., Hasegawa, K., Tsutsumi, S., Goto, Y., Gejyo, F., and Naiki, H. (2004) Glycosaminoglycans enhance the trifluoroethanol-induced extension of beta2-microglobulin-related amyloid fibrils at a neutral pH. J. Am. Soc. Nephrol. 15:126-33.
20. Kihara, M., Chatani, E., Sakai, M., Hasegawa, K., Naiki, H., and Goto, Y. (2005) Seeding-dependent maturation of beta2-microglobulin amyloid fibrils at neutral pH. J. Biol. Chem. 280:12012-12018.
21. Chiti, F., De Lorenzi, E., Grossi, S., Mangione, P., Giorgetti, S., Caccialanza, G., Dobson, C. M., Merlini, G., Ramponi, G., and Bellotti, V. (2001) A partially structured species of beta2-microglobulin is significantly populated under physiological conditions and involved in fibrillogenesis. J. Biol. Chem. 276:46714-46721.
22. Esposito, G., Michelutti, R., Verdone, G., Viglino, P., Hernández, H., Robinson, C.V., Amoresano, A., Dal Piaz, F., Monti, M., Pucci, P., Mangione, P., Stoppini, M., Merlini, G., Ferri, G., and Bellotti V. (2000) Removal of the N-terminal hexapeptide from human beta2-microglobulin facilitates protein aggregation and fibril formation. Protein Science 9:831-845.
23. Heegaard, N. H., Jorgensen T. J., Rozlosnik, N., Corlin, D. B., Pedersen, J. S., Tempesta, A. G., Roepstorff, P., Bauer, R., Nissen, M. H. (2005) Unfolding, aggregation, and seeded amyloid formation of lysine-58-cleaved beta2-microglobulin. Biochemistry 44:4397-4407
24. S. L. Myers, S. Jones, T. R. Jahn, I. J. Morten, G. A. Tennent, E. W. Hewitt, S. H. Radford (2006) A systematic study of the effect of physiological factors on beta2-microglobulin amyloid formation at neutral pH. Biochemistry 45:2311-2321.

Programma di ricerca

Individuazione di determinanti di folding e misfolding mediante mutagenesi sistematica
Università di riferimento
Università degli Studi di GENOVA - FISICA - ()
Responsabile dell'Unità di ricerca
Annalisa Relini
Descrizione
L’attivita’ di ricerca dell’Unita’ di Genova consistera’ nello studio dell’aggregazione di mutanti della beta2-microglobulina (beta2-m) mediante microscopia a forza atomica (AFM). I mutanti di beta2-m saranno prodotti dall’Unita’ di Pavia e le nostre misure AFM saranno complementari ai risultati ottenuti a Pavia utilizzando la fluorescenza della tioflavina T, la marcatura con Congo red e la microscopia elettronica.
In particolare, i compiti dell’Unita’ di Genova sono i seguenti:
1 – caratterizzare la morfologia degli aggregati, sia in ambiente liquido sia in aria;
2 – effettuare un’analisi cinetica del processo di crescita delle fibrille;
3 – ottenere informazioni sull’influenza della carica superficiale e dell’idrofobicita’sul processo di aggregazione.
Questi compiti saranno sviluppati come segue:
1. Caratterizzazione strutturale di aggregati prefibrillari e fibrillari: questo compito si estendera’ per l’intera durata del progetto. Il processo di fibrillogenesi sara’ studiato nelle diverse condizioni di aggregazione utilizzate dall’Unita’ di Pavia:
i) incubazione a 37°C in sodio acetato 50 mM, pH 6.4 in presenza di collagene;
ii) incubazione a 37°C in sodio fosfato 50 mM, NaCl 100 mM, pH 7.4, in presenza di trifluoroetanolo 20% e nuclei preformati (seeds);
iii) incubazione a 37°C in sodio citrato 50 mM, NaCl 100 mM, pH 2.5 in presenza di nuclei preformati.
Un’attenzione particolare verra’ rivolta alla condizione i) che e’ la piu’ vicina allo stato fisio-patologico mai riportata in letteratura; ci si aspetta pertanto che da essa possa scaturire un contributo significativo alla comprensione del processo di deposizione della beta2-m che avviene nell’amiloidosi associata ad emodialisi. L’aggregazione dei mutanti di beta2-m verra’ dapprima studiata in presenza di collagene fibrillare di tipo I utilizzando le stesse procedure messe a punto recentemente per la beta2-m wild type (Relini et al., 2006). Quindi le condizioni sperimentali saranno estese all’impiego di collagene di tipo II e di collagene umano, allo scopo di avvicinarsi ulteriormente alle condizioni fisio-patologiche. Tutti i tipi di collagene saranno preparati dall’Unita’ di Pavia. In questo contesto sara’ inoltre studiato l’effetto dell’eparina sul processo di fibrillogenesi. L’eparina infatti è impiegata come anticoagulante nell’emodialisi; misure AFM preliminari hanno mostrato che in presenza di concentrazioni di eparina paragonabili a quelle utilizzate nelle terapie, il processo di fibrillogenesi della beta2-m wild type e’ piu’ veloce.
Per le misure AFM, aliquote del campione saranno estratte a tempi diversi durante il processo di aggregazione e verranno depositate su una superficie di mica sfogliata di fresco. Si operera’ in modalita’ tapping, che permette di visualizzare campioni soffici senza danneggiarli, in aria o in soluzione acquosa. La procedura di deposizione del campione verra’ ottimizzata in base alla condizione di aggregazione utilizzata. Recentemente abbiamo osservato (Relini et al., 2006) che in presenza di collagene la fibrillogenesi e’ strettamente localizzata in prossimita’ della superficie del collagene; pertanto in questo caso si avra’ cura di depositare il collagene insieme alla goccia di soluzione che lo circonda. Impiegando le condizioni ii) e iii), i campioni da visualizzare in aria saranno drasticamente diluiti prima della deposizione allo scopo di evitare la cristallizzazione dei sali durante il processo di asciugatura. Le dimensioni degli aggregati saranno misurate attraverso il sezionamento delle immagini “in altezza” che essendo costruite mediante il segnale del piezoelettrico contengono informazioni quantitative. Inoltre verra’ misurata la lunghezza di persistenza delle fibrille.
2. Analisi cinetica del processo di crescita delle fibrille: verra’ misurata la lunghezza di un insieme statisticamente significativo di fibrille in funzione del tempo di aggregazione. Questi esperimenti ci permetteranno di determinare la velocita’ di elongazione delle fibrille e fornira’ informazioni sulla cinetica del processo di aggregazione. I risultati saranno confrontati con quelli ottenuti a Pavia utilizzando altre tecniche come la fluorescenza della tioflavina e la microscopia elettronica. Le condizioni di aggregazione e la preparazione dei campioni saranno le stesse descritte al punto 1. Questo compito si estendera’ per l’intera durata del progetto.
3. Effetto della carica superficiale e dell’idrofobicita’ sul processo di aggregazione: i risultati ottenuti finora indicano che le interazioni elettrostatiche hanno un ruolo importante nell’aggregazione della beta2-m; in particolare, per ottenere la formazione di fibrille a 37°C e pH 6.4 e’ richiesta le presenza di superfici cariche positivamente (come quelle presenti sulle fibre di collagene). Misure di potenziale zeta permetteranno di valutare la carica superficiale degli aggregati a tempi diversi del processo di aggregazione per mutanti diversi di beta2-m.
Un altro parametro degno di interesse e’ l’idrofobicita’ degli aggregati. Informazioni rilevanti possono essere ottenute confrontando la capacita’ di mutanti diversi di interagire con membrane modello come liposomi, membrane planari e monostrati di fosfolipidi. A seconda del sistema modello considerato, in questi esperimenti saranno effettuate, rispettivamente, misure di fluorescenza del rilascio di calceina incapsulata nei liposomi, analisi della morfologia delle membrane mediante AFM e misure della pressione superficiale dei monostrati. Questo compito sara’ effettuato nel secondo anno di progetto e coinvolgera’ un insieme rappresentativo di mutanti, selezionati in base ai risultati ottenuti nel primo anno dalle unita’ di ricerca coinvolte in questo progetto.

A. Relini, C. Canale, S. De Stefano, R. Rolandi, S. Giorgetti, M. Stoppini, A. Rossi, F. Fogolari, A. Corazza, G. Esposito, A. Gliozzi, V. Bellotti. (2006) Collagen plays an active role in the aggregation of beta2-microglobulin under physio-pathological conditions of dialysis-related amyloidosis. J. Biol. Chem., in press; doi 10.1074/jbc.M513827200.